Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2023. Том 68. № 5

DOI:10.33266/1024-6177-2023-68-5-88-95

А.А. Медведева, А.Н. Рыбина, Р.В. Зельчан, Л.А. Таширева, О.Д. Брагина,
А.В. Дорошенко, Е.Ю. Гарбуков, Н.А. Тарабановская, В.И. Чернов

РАДИОНУКЛИДНАЯ ДИАГНОСТИКА СТОРОЖЕВЫХ ЛИМФАТИЧЕСКИХ УЗЛОВ ПРИ ОПУХОЛЯХ МОЛОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ С РАДИОФАРМАЦЕВТИЧЕСКИМ
ЛЕКАРСТВЕННЫМ ПРЕПАРАТОМ НА ОСНОВЕ МЕЧЕНОГО ТЕХНЕЦИЕМ-99m ГАММА-ОКСИДА АЛЮМИНИЯ

Научно-исследовательский институт онкологии Томского национального исследовательского медицинского центра РАН, Томск

Контактное лицо: Анна Александровна Медведева, e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.


РЕФЕРАТ

Цель: Провести анализ результатов радионуклидной диагностики сторожевых лимфатических узлов (СЛУ) у больных раком молочной железы (РМЖ) с радиофармацевтическим лекарственным препаратом (РФЛП) Сентискан, 99mТс (производитель ООО «МедикорФарма-Урал») с применением мультимодальной методики ОФЭКТ/КТ. 

Материал и методы: Исследование носило ретроспективный характер, в исследование было включено 48 больных РМЖ с клинической стадией T2‒3N0M0, которым выполнялась радионуклидная диагностика СЛУ и на этапе визуализации проводили ОФЭКТ/КТ. Изображения оценивались визуально, анализировался уровень аккумуляции РФЛП в лимфатических узлах (ЛУ), в качестве количественного параметра использовался SUVmax. Интраоперационная детекция СЛУ гамма-зондом с последующим гистологическим исследованием также проводилась с расчетом уровня аккумуляции РФЛП.

Результаты: На совмещенных томосцинтиграммах ЛУ визуализировались у 43 пациенток из 48, интраоперационно ‒ в 46 случаях, у 2 больных накопления РФЛП в проекции ЛУ отмечено не было ни по данным ОФЭКТ/КТ, ни интраоперационно. При анализе интенсивности накопления РФЛП по данным ОФЭКТ/КТ отмечался достаточно большой разброс показателей SUVmax‒35 [10‒104]. Сторожевыми считались ЛУ с уровнем накопления в них РФЛП не менее 10 % от самого интенсивного узла. По данным ОФЭКТ/КТ было выявлено 165 ЛУ, среднее количество выявленных у одной пациентки составило 2 [1‒3], максимальное количество ‒ 6 ЛУ. У всех пациенток ЛУ определялись в проекции 1 уровня, в 25 случаях ‒ и в проекции других зон регионарного лимфооттока. Общее количество удаленных во время операции ЛУ составило n=247, в среднем у одной пациентки удалялось 3 [2‒5] лимфатических узла, максимально ‒ 8 узлов.

Заключение: Чувствительность радионуклидной диагностики СЛУ с 99mТс-сентисканом составила 89,6 % по данным ОФЭКТ/КТ и 95,8 % по результатам интраоперационной детекции. Использование мультимодальной визуализации дает информацию о точной анатомической локализации лимфатических узлов. При отсутствии сцинтиграфической визуализации перераспределения РФЛП по лимфатическому коллектору выполнение интраоперационной детекции не теряет своей актуальности.

Ключевые слова: рак молочной железы, сторожевой лимфатический узел, радионуклидный коллоид, однофотонная эмиссионная компьютерная томография, гамма-зонд

Для цитирования: Медведева А.А., Рыбина А.Н., Зельчан Р.В., Таширева Л.А., Брагина О.Д., Дорошенко А.В., Гарбуков Е.Ю., Тарабановская Н.А., Чернов В.И. Радионуклидная диагностика сторожевых лимфатических узлов при опухолях молочной железы с радиофармацевтическим лекарственным препаратом на основе меченого технецием-99m гамма-оксида алюминия // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2023. Т. 68. № 5. С. 88–95. DOI:10.33266/1024-6177-2023-68-5-88-95

 

Список литературы

1. Cabañas R.M. An Approach for the Treatment of Penile Cancer // Cancer. 1977. No. 39. P. 456-466.

2. Morton D. Technical Details of Intraoperative Lymphatic Mapping for Early Stage Melanoma // Arch. Surg. 1992. V.127, No. 4. P. 392. DOI: 10.1001/ archsurg.1992.01420040034005.

3. Alex J.C., Krag D.N. The Gamma-Probe-Guided Resection of Radiolabeled Primary // Lymph Nodes // Surg. Oncol. Clin N Am. 1996. V.5, No. 1. P. 33–41.

4. Boada A., Tejera-Vaquerizo A., Ribero S., Puig S., Moreno-Ramírez D., Quaglino P., Osella-Abate S., Cassoni P., Malvehy J., Carrera C., Pigem R., Barreiro-Capurro A., Requena C., Traves V., Manrique-Silva E., Fernández-Orland A., Ferrandiz L., García-Senosiain O., Fernández-Figueras M.T., Ferrándiz C., Nagore E. Factors Associated with Sentinel Lymph Node Status and Prognostic Role of Completion Lymph Node Dissection for Thick Melanoma // Eur. J. Surg. Oncol. 2020. V.46, No. 2. P. 263–271. doi: 10.1016/j.ejso.2019.09.189. 

5. Lafuente-Sanchis A., Olmo A., Carretero J., Alcacer Fernandez-Coronado J., Estors-Guerrero M., Martínez-Hernández N.J., Cremades A., Zúñiga A., Alcacer J., Farras R., Cuenca M., Galbis-Caravajal J.M. Clinical Significance of Epithelial-mesenchymal Transition-related Markers Expression in the Micrometastatic Sentinel Lymph Node of NSCLC // Clin. Transl. Oncol. 2020. V.22, No. 3. P. 381–391. doi: 10.1007/s12094-019-02138-3.

6. Ni J.S., Janz T.A., Nguyen S.A., Lentsch E.J. Predictors of Occult Lymph Node Metastasis in Cutaneous Head and Neck Melanoma // World J. Otorhinolaryngol Head Neck Surg. 2019. V.5, No. 4. P. 200–206. doi: 10.1016/j.wjorl.2019.02.003.

7. Touhami O., Grégoire J., Renaud M.C., Sebastianelli A., Plante M. Performance of Sentinel Lymph Node (SLN) Mapping in High-risk Endometrial Cancer // Gynecol Oncol. 2017. V.147, No. 3. P. 549–553. doi: 10.1016/j.ygyno.2017.09.014.

8. Moo T.A., Sanford R., Dang C., Morrow M. Overview of Breast Cancer Therapy // PET Clin. 2018. V.13, No. 3. P. 339–354. doi: 10.1016/j.cpet.2018.02.006.

9. Plichta J.K. Breast Cancer Prognostic Staging and Internal Mammary Lymph Node Metastases: a Brief Overview // Chin. Clin. Oncol. 2019. No. 8. P. 1–11. DOI: 10.21037/cco.2019.01.09.

10. Чернов В.И., Дудникова Е.А., Зельчан Р.В., Кравчук Т.Л., Данилова А.В., Медведева А.А., Синилкин И.Г., Брагина О.Д., Гольдберг В.Е., Гольдберг А.В., Фролова И.Г. Однофотонная эмиссионная компьютерная томография с 99mtc-1-тио-d-глюкозой в диагностике и стадировании злокачественных лимфом: первый опыт использования // Sibirskiy Onkologicheskiy Zhurnal = Siberian Journal of Oncology. 2018. Т.17, № 4. С. 81-87.

11. Bragina O., Chernov V., Zelchan R., Medvedeva A., Schulga A., Vorobyeva A., Orlova A., Deyev S., Tolmachev V., Konovalova E., Garbukov E., Tashireva L., Sorensen J. Phase I trial of 99mTc-(He)3-G3, a Darpin-based Probe for Imaging of Her2 Expression in Breast Cancer // Journal of Nuclear Medicine. 2022. V.63. No. 4. P. 528-535.

12. Чернов В.И., Медведева А.А., Синилкин И.Г., Зельчан Р.В., Брагина О.Д. Разработка радиофармпрепаратов для радионуклидной диагностики в онкологии // Медицинская визуализация. 2016. №2. С. 63-66.

13. Zhang Jing-Jie, Zhang Wan-Chun, An Cai-Xia, Li Xiao-Min, Ma Le. Comparative Research on 99mTc-Rituximab and 99mTc-sulfur Colloid in Sentinel Lymph Node Imaging of Breast Cancer // BMC Cancer. 2019. V.19, No. 1. P. 956. doi: 10.1186/s12885-019-6197-9.

14. Unkart J.T., Hosseini A., Wallace A.M. Tc-99m Tilmanocept Versus Tc-99m Sulfur Colloid in Breast Cancer Sentinel Lymph Node Identification: Results from a Randomized, Blinded Clinical Trial //
J. Surg. Oncol. 2017. V.116, No. 7. P. 819–823.

15. Криворотько П.В., Канаев С.В., Семиглазов В.Ф., Новиков С.Н., Крживицкий П.И., Семенов И.И., Туркевич Е.А., Бусько Е.А., Донских Р.В., Брянцева Ж.В., Пискунов Е.А., Труфанова Е.С., Черная А.В. Методологические проблемы биопсии сигнальных лимфатических узлов у больных раком молочной железы // Вопросы онкологии. 2015. Т.61, № 3. С. 418-423.

16. Giammarile F., Alazraki N., Aarsvold J.N., Audisio R.A., Glass E., Grant S.F., Kunikowska J., Leidenius M., Moncayo V.M., Uren R.F., Oyen W.J.G., Olmos R.A.V., Sicart S.V. The EANM and SNMMI Practice Guideline for Lymphoscintigraphy and Sentinel Node Localization in Breast Cancer // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2013. No. 40. P. 1932–1947.

17. Navalkissoor S., Wagner T., Gnanasegaran G. SPECT/CT in Imaging Sentinel Nodes // ClinTransl Imaging. 2015. V.3, No. 3. P. 203–215. doi: 10.1007/s40336- 015-0113-3. 

18. Olmos V.R.A., Rietbergen D.D.D., Vidal-Sicart S. SPECT/CT and Sentinel Node Lymphoscintigraphy // ClinTransl Imaging. 2014. V.2, No. 6. P. 491–504. doi: 10.1007/s40336-014-0087-6.

19. Mucientes R.J., Farge B.L., Cardona A.J., Moreno E.A., Delgado-Bolton R, Izarduy P.L., Rodríguez R.C., Lapeña G.L., González M.A., Román S.J.M., Carreras D.J.L. SPECT-CT: a New Tool for Localisation of Sentinel Lymph Nodes in Breast Cancer Patients // Rev. Esp. Med. Nucl. 2008. V.27, No. 3. P. 183-190.

20. Крживицкий П.И., Канаев С.В., Новиков С.Н., Черная А.В., Криворотько П.В., Семиглазов В.Ф., Семенов И.И., Пономарева О.И., Ильин Н.Д., Жукова Л.А. Использование ОФЭКТ-КТ для визуализации сигнальных лимфатических узлов у больных раком молочной железы // Вопросы онкологии. 2015. Т.61, № 4. С. 624-626.

21. Крживицкий П.И., Канаев С.В., Новиков С.Н., Новиков Р.В., Семенов И.И., Пономарева О.И., Ильин Н.Д., Петрова А.С. Применение ОФЭКТ-КТ для визуализации сигнальных лимфатических узлов и путей лимфооттока у больных раком предстательной железы // Вопросы онкологии. 2016. Т.62, № 2. С. 272-276.

22. Канаев С.В., Новиков С.Н., Крживицкий П.И., Раджабова З.А., Котов М.А., Пономарева О.И., Гиршович М.М., Артемьев С.С., Артемьева А.С., Мельник Ю.С. Применение ОФЭКТ-КТ для визуализации сигнальных лимфатических узлов и путей лимфооттока у больных раком языка // Вопросы онкологии. 2019. Т.65, № 2. С. 250-255.

23. Jimenez-Heffernan A., Ellmann A., Sado H., Huić D., Bal C., Parameswaran R., Giammarile F., Pruzzo R., Kostadinova I., Vorster M., Almeida P., Santiago J., Gambhir S., Sergieva S., Calderon A., Young G.O., Valdes-Olmos R., Zaknun J., Magboo V.P., Pascual T.N. Results of a Prospective Multicenter International Atomic Energy Agency Sentinel Node Trial on the Value of SPECT/CT Over Planar Imaging in Various Malignancies // J. Nucl. Med. 2015. V.56, No. 9. P. 1338-1344. doi: 10.2967/jnumed.114.153643.

24. Pouw B., Hellingman D., Kieft M., Vogel W.V., van Os K.J., Rutgers E.J., Valdés Olmos R.A., Stokkel M.P. The Hidden Sentinel Node in Breast Cancer: Reevaluating the Role of SPECT/CT and Tracer Reinjection // Eur. J. Surg. Oncol. 2016. V.42, No. 4. P. 497-503. doi: 10.1016/j.ejso.2015.12.009.

25. Варламова Н.В., Скуридин В.С., Нестеров Е.А., Ларионова Л.А., Чернов В.И. Исследование кумулятивных свойств радиофармпрепарата «Наноколлоид, 99mTc-Al2O3» на крысах // Вестн. Новосибирского гос. ун-та. Серия: Биология, клиническая медицина. 2015. Т.13, № 2. С. 40–44.

26. Варламова Н.В., Стасюк Е.С., Тицкая А.А., Синилкин И.Г., Ларионова Л.А., Шерстобоев Е.Ю., Трофимова Е.С., Лигачева А.А., Скуридин В.С. Изучение аллергизирующих свойств радиофармпрепарата «Наноколлоид, 99mТc-Аl2O3» в эксперименте // Современные технологии в медицине. 2015. №4. С.72–77.

27. Скуридин В.С., Чернов В.И., Варламова Н.В., Нестеров Е.А., Синилкин И.Г., Зельчан Р.В. Исследование функциональной пригодности радиофармпрепарата «Наноколлоид, 99mTc-Al2O3» для сцинтиграфического и интраоперационного выявления «сторожевых» лимфатических узлов // Диагностическая и интервенционная радиология. 2015. № 3. С.76–80.

28. Зельчан Р.В., Медведева А.А., Синилкин И.Г., Брагина О.Д., Чернов В.И., Стасюк Е.С., Ильина Е.А., Скуридин В.С. Изучение функциональной пригодности туморотропного радиофармпрепарата 99mТс-1-тио-6-глюкоза в эксперименте // Молекулярная медицина. 2018. Т.16, № 3. С. 54-57.

29. Синилкин И.Г., Чернов В.И., Коломиец Л.А., Слонимская Е.М., Медведева А.А., Зельчан Р.В., Чернышова А.Л., Дорошенко А.В., Ляпунов А.Ю. Первый опыт клинического применения нового отечественного радиофармпрепарата 99мТс-гамма-оксид алюминия для визуализации сторожевых лимфатических узлов при злокачественных новообразованиях // Медицинская визуализация. 2016. № 2. С. 57-62.

30. McMasters K.M., Reintgen D.S., Ross M.I., Wong S.L., Gershenwald J.E., Krag D.N., Noyes R.D., Viar V., Cerrito P.B., Edwards M.J. Sentinel Lymph Node Biopsy for Melanoma: How Many Radioactive Nodes should be Removed? // Ann. Surg. Oncol. 2001. V.8, No. 3. P. 192–197.

31. Boughey J.C., Suman V.J., Mittendorf E.A., Ahrendt G.M., Wilke L.G., Taback B., Leitch A.M., Kuerer H.M., Bowling M., Flippo-Morton T.S., Byrd D.R., Ollila D.W., Julian T.B., McLaughlin S.A., McCall L., Symmans W.F., Le-Petross H.T., Haffty B.G., Buchholz T.A., Nelson H., Hunt K.K., Alliance for Clinical Trials in Oncology. Sentinel Lymph Node Surgery after Neoadjuvant Chemotherapy in Patients with Node-positive Breast Cancer: the ACOSOG Z1071 (Alliance) clinical trial // JAMA. 2013. V.310, No. 14. P. 1455–1461. doi: 10.1001/jama.2013.278932.

32. Kuehn T., Bauerfeind I., Fehm T., Fleige B., Hausschild M., Helms G., Lebeau A., Liedtke C., von Minckwitz G., Nekljudova V., Schmatloch S., Schrenk P., Staebler A., Untch M. Sentinel-Lymph-Node Biopsy in Patients with Breast Cancer before and after Neoadjuvant Chemotherapy (SENTINA): a Prospective, Multicentre Cohort Study // Lancet Oncol. 2013. V.14, No. 7. P. 609–618. doi: 10.1016/S1470-2045(13)70166-9.

33. Krag D., Anderson S., Julian T., et al. Technical Outcomes of Sentinel-Lymph-Node Resection and Conventional Axillary-Lymphnode Dissection in Patients with Clinically Node-negative Breast Cancer: Results from the NSABP B-32 Randomised Phase III Trial // Lancet Oncol. 2007. V.8, No. 10. P. 881–888.

34. Li S., Liu F., Chen K., Rao N., Xie Y., Su F., Zhu L. The Extent of Axillary Surgery is Associated with Breast Cancer-specifc Survival in T1–2 Breast Cancer Patients with 1 or 2 Positive Lymph Nodes: a SEER-population Study // Medicine. 1995. No. 14. P. e3254.

35. National Comprehensive Cancer Network: NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology, Breast Cancer. Version. 1.2018.

36. Cheng G., Kurita S., Torigian D.A., Alavi A. Current Status of Sentinel Lymph-node Biopsy in Patients with Breast Cancer // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2011. No. 38. P. 562-575.

37. Magnoni F., Corso G., Gilardi L., Pagan E., Massari G., Girardi A., Ghidinelli F., Bagnardi V., Galimberti V., Grana C.M., Veronesi P. Does Failed Mapping Predict Sentinel Lymph Node Metastasis in cN0 Breast Cancer? // Future Oncol. 2022. V.18, No. 2. P. 193-204. doi: 10.2217/fon-2021-0470.

38. Giammarile F., Alazraki N., Aarsvold J.N., Audisio R.A., Glass E., Grant S.F., Kunikowska J., Leidenius M., Moncayo V.M., Uren R.F., Oyen W.J., Valdés Olmos R.A., Vidal Sicart S. The EANM and SNMMI Practice Guideline for Lymphoscintigraphy and Sentinel Node Localization in Breast Cancer // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2013. V.40, No. 12. P. 1932-1947. doi: 10.1007/s00259-013-2544-2. 

 

 PDF (RUS) Полная версия статьи

 

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.

Участие авторов. Медведева А.А.: сбор и анализ литературного материала, разработка концепции и дизайна, анализ и интерпретация данных, написание текста; Чернов В.И.: разработка концепции и дизайна, научное редактирование текста, окончательное утверждение для публикации рукописи; Рыбина А.Н., Зельчан Р.В., Брагина О.Д.: разработка концепции исследования, разработка дизайна исследования, анализ данных, редактирование текста; Дорошенко А.В., Гарбуков Е.Ю., Тарабановская Н.И., Тширева Л.А.: сбор материала, анализ данных, статистическая обработка данных, редактирование текста.

Поступила: 20.04.2023. Принята к публикации: 27.05.2023.