Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Том 67. № 3
Е.В. Голуб, В.В. Полькин, Г.Ф. Михайлова,
Т.Г. Шкаврова, В.В. Цепенко, Ф.Е. Севрюков, В.С. Медведев
ОПРЕДЕЛЕНИЕ РАДИОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ БОЛЬНЫХ РАКОМ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПОЛОСТИ РТА ПО ЧАСТОТЕ
КЛЕТОК С ПОЛИСОМИЕЙ ХРОМОСОМ 7 И 11
ПРИ ФРАКЦИОНИРОВАННОЙ ГАММА-ЛУЧЕВОЙ ТЕРАПИИ
Медицинский радиологический научный центр им. А.Ф. Цыба Минздрава России, Обнинск
Контактное лицо: Елена Викторовна Голуб, e-mail: This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it.
РЕФЕРАТ
Цель: Исследовать динамику частоты клеток опухоли с полисомией хромосом 7 и 11 в процессе фракционированной гамма-лучевой терапии больных раком слизистой оболочки полости рта (СОПР).
Материал и методы: Исследование проведено методом флуоресцентной in situ гибридизации на мазках, взятых у 19 пациентов со злокачественной опухоли СОПР до лечения и в процессе гамма-лучевой терапии: после первой суммарной очаговой дозы (СОД) до 18,0 Гр и после второй СОД – до 32,0 Гр. В качестве контроля брали мазки СОПР у 12 клинически здоровых людей.
Результаты: В контрольной группе среднегрупповая частота клеток с полисомией хромосом 7 и 11 составляла 0,7 ± 0,2 % и 0,3 ±
0,1 % соответственно. В группе пациентов с раком СОПР до начала лечения среднегрупповая частота клеток с полисомией хромосомы 7 составила 32,3 ± 4,5 %, а после 1 СОД и 2 СОД – 15,7 ± 2,9 % и 8,0 ± 2,3 % соответственно. Анализ динамики среднегрупповых показателей выявил статистически значимое (р < 0,05) снижение частоты клеток с полисомией хромосомы 7 в процессе лучевой терапии. Среднегрупповая частота клеток с полисомией хромосомы 11 также статистически значимо (р < 0,05) снижалась в процессе терапии: до лечения – 25,8 ± 5,6 %, после 1 СОД и 2 СОД – 12,2 ± 2,4 % и 5,4 ± 0,9 % соответственно. Сравнение полученных значений с соответствующими среднегрупповыми показателями контрольной группы выявило статистически значимое (р < 0,01) превышение по всем показателям. После проведенной фракционированной гамма-лучевой терапии частота клеток с полисомией исследованных хромосом 7 и/или 11 у 16 (84 %) пациентов была статистически значимо ниже (р < 0,05) уровней до лечения, из них у 6 (32 %) пациентов данные показатели снизились до уровней контроля.
У 4 пациентов (21 %) наблюдалось сначала повышение, а затем снижение частоты таких клеток. У 5 (26 %) пациентов на протяжении всего курса гамма-лучевой терапии наблюдалось увеличение частоты клеток с полисомией хромосом 7 и/или 11, либо частота этих клеток сохранялась на уровне, выявленном до лечения.
Заключение: Исследование молекулярно-цитогенетических нарушений в клетках опухоли СОПР пациентов до лечения и после фракционированной гамма-лучевой терапии показало, что полисомия хромосом, являющаяся показателем нестабильности генома, может быть индикатором отклика опухоли на проводимую терапию.
Ключевые слова: рак полости рта, полисомия хромосом, FISH анализ, радиочувствительность, фракционированная гамма-лучевая терапия
Для цитирования: Голуб Е.В., Полькин В.В., Михайлова Г.Ф., Шкаврова Т.Г., Цепенко В.В., Севрюков Ф.Е., Медведев В.С. Определение радиочувствительности пациентов с раком слизистой оболочки полости рта по частоте клеток с полисомией хромосом 7 и 11 при фракционированной гамма-лучевой терапии // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Т. 67. № 3. С. 47–52. DOI:10.33266/1024-6177-2022-67-3-47-52
Список литературы
1. The State of Cancer Care to the Population in Russia in 2019 (Morbidity and Mortality). Ed. Kaprin A.D., Starinskiy V.V., Shakhzadova A.O. Moscow Publ., 2020 (In Russ.). [Состояние онкологической помощи населению в России в 2019 году (заболеваемость и смертность) / Под ред. Каприна АД, Старинского ВВ, Шахзадовой АО. М: МНИОИ им. П.А.Герцена, 2020].
2. Papanikolaou V.S., Kyrodimos E., Tsiambas E., Giotakis E., Psyrri A., Ragos V., Chrysovergis A. Chromosomal Instability in Oral Squamous Cell Carcinoma. J. BUON. 2018;23;6:1580-1582.
3. Sato H., Uzawa N., Takahashi K.I., Myo K., Ohyama Y., Amagasa T. Prognostic Utility of Chromosomal Instability Detected by Fluorescence in Situ Hybridization in Fine-Needle Aspirates from Oral Squamous Cell Carcinomas. BMC Cancer. 2010;10:182. doi: 10.1186/1471-2407-10-182.
4. Alterio D., Marvaso G., Maffini F., Gandini S., Choocca S., Ferrari A. Role of EGFR as Prognostic Factor in Head and Neck Cancer Patients Treated with Surgery and Postoperative Radiotherapy: Proposal of a New Approach Behind the EGFR Overexpression. Med. Oncol. 2017;34;6:107. doi: 10.1007/s12032-017-0965-7.
5. Nikitakis N.G., Pentenero M., Georgaki M., et all. Molecular Markers Associated with Development and Progression of Potentially Premalignant Oral Epithelial Lesions: Current Knowledge and Future Implications. Oral. Surg. Oral. Med. Oral. Pathol Oral Radiol. 2018;125;6:650-669. doi: 10.1016/j.oooo.2018.03.012.
6. Sia J., Szmyd R., Hau E., Gee H,E. Molecular Mechanisms of Radiation-Induced Cancer Cell Death: a Primer. Front. Cell. Dev. Biol. 2020;8;41. DOI: 10.3389/fcell.2020.00041.
7. Dando I., Cordani M., Pozza D.E., Biondani G., Donadelli M., Palmieri M. Antioxidant Mechanisms and ROS-Related Micro-RNAs in Cancer Stem Cells. Oxid. Med. Cell. Longev. 2015;2015:425708. doi: 10.1155/2015/425708.
8. Chang L., Graham P., Hao J., Ni J., Deng J., Bucci J., et al. Cancer Stem Cells and Signaling Pathways in Radioresistance. Oncotarget. 2016;7;10:11002-11017. DOI: 10.18632/oncotarget.6760.
9. Eriksson D., Löfroth P.O., Johansson L., Riklund K.A., Stigbrand T. Cell Cycle Disturbances and Mitotic Catastrophes in HeLa Hep2 Cells Following 2.5 to 10 Gy of Ionizing Radiation. Clin. Cancer. Res. 2007;13;18 Pt 2:5501s-5508s. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-07-0980.
10. Lee S.Y., Jeong E.K., Ju M.K., Jeon H.M., Kim M.Y., Kim C.H., et al. Induction of Metastasis, Cancer Stem Cell Phenotype and Oncogenic Metabolism in Cancer Cells by Ionizing Radiation. Mol. Cancer. 2017;16;1:10. doi: 10.1186/s12943-016-0577-4.
11. Kavanagh B.D., Lin P.S., Chen P., Schmidt-Ullrich RK. Radiation-Induced Enhanced Proliferation of Human Squamous Cancer Cells in Vitro: a Release from Inhibition by Epidermal Growth Factor. Clin. Cancer Res. 1995;1;12:1557-1562.
12. Chien H.T., Cheng S.D., Liao C.T., Wang H.M., Huang S.F. Amplification of the EGFR and CCND1 Are Coordinated and Play Important Roles in the Progression of Oral Squamous Cell Carcinomas. Cancers (Basel). 2019;11;6:760. doi: 10.3390/cancers11060760.
13. Fujimichi Y., Hamada N. Ionizing Irradiation Not Only Inactivates Clonogenic Potential in Primary Normal Human Diploid Lens Epithelial Cells But Also Stimulates Cell Proliferation in a Subset of this Population. PLoS ONE. 2014;9;5:e98154. doi: 10.1371/journal.pone.0098154.
14. Oliveira-Junior R.J., Goulart L.R., Bastos L.M., Alves D.D., dos Santos e Silva S.V., Morelli S. Contributions of Cytogenetics to Cancer Research. Biosci. J. 2014;30;1:245-260.
PDF (RUS) Полная версия статьи
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.
Участие авторов. Cтатья подготовлена с равным участием авторов.
Поступила: 17.01.2022. Принята к публикации: 15.03.2022.