О ЖУРНАЛЕ
Научный журнал «Медицинская радиология и радиационная безопасность» (Мedical Radiology and Radiation Safety), ISSN 1024-6177 основан в январе 1956 г. (до 30 декабря 1993 г. выходил под названием «Медицинская радиология», ISSN 0025-8334). В 2018 году журнал получил Online ISSN: 2618-9615 и был зарегистрирован как электронное сетевое издание в Роскомнадзоре 29 марта 2018 года. На его страницах публикуются оригинальные научные статьи по вопросам радиобиологии, радиационной медицины, радиационной безопасности, лучевой терапии, ядерной медицины, а также научные обзоры; в целом журнал имеет более 30 рубрик и представляет интерес для специалистов, работающих в областях медицины¸ радиационной биологии, эпидемиологии, медицинской физики и техники. С 01.07.2008 г. Издатель журнала – ФГБУ «Государственный научный центр Российской Федерации – Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна» ФМБА России. Учредитель с 1956 г. - Министерство здравоохранения РФ, а с 2008 г. по настоящее время – Федеральное медико-биологическое агентство.
Членами редакционной коллегии журнала являются ученые – специалисты, работающие в области радиационной биологии и медицины, радиационной защиты, радиационной эпидемиологии, радиационной онкологии, лучевой диагностики и терапии, ядерной медицины и медицинской физики. В состав редакционной коллегии входят: академики РАН, члены-корреспонденты РАН, доктора медицинских наук, профессора, кандидаты и доктора биологических, физико-математических наук и технических наук. Состав редколлегии постоянно пополняется за счет авторитетных специалистов, работающих в ближнем и дальнем зарубежье.
Периодичность выхода в свет – 6 номеров в год, объемом – 13,5 усл. печатных листов или 88 печатных страниц и тиражом 1000 экземпляров. Журнал имеет идентичную по содержанию полнотекстовую электронную версию, которая одновременно с печатным вариантом и цветными рисунками размещается на сайтах Научной Электронной Библиотеки (НЭБ) и сайте журнала. Распространение по подписке через Агентство «Роспечать» по договору № 7407 от 16 июня 2006 г., через индивидуальных покупателей и коммерческие структуры. Публикация статей бесплатная.
Журнал входит в Перечень ведущих российских рецензируемых научных журналов ВАК, рекомендованных для опубликования результатов диссертационных исследований. С 2008 г. журнал представлен в Интернете и индексируется в базе данных РИНЦ, а также входит в Перечень Russian Science Citation Index (RSCI), размещенной на платформе Web of Science. С 2 февраля 2018 года журнал «Медицинская радиология и радиационная безопасность" индексируется в мультидисциплинарной библиографической и реферативной базе SCOPUS.
Краткие электронные версии статей журнала с 2005 г. находятся в открытом доступе в разделе "Выпуски журнала". С 2011 года в открытом доступе представлены все выпуски журнала целиком, а с 2016 года - полнотекстовые версии научных статей. Полный текст остальных статей любого номера, начиная с 2005 г. могут приобрести подписчики только через НЭБ. Редакция журнала «Медицинская радиология и радиационная безопасность» в соответствии с договором с НЭБ поставляет ей в полном объеме выпускаемую продукцию с 2005 г. по настоящее время.
Основным рабочим языком журнала является русский, дополнительный язык – английский, который используется для написания названий статей, сведений об авторах, аннотаций, ключевых слов, списка литературы.
С 2017 г. журнал «Медицинская радиология и радиационная безопасность» перешел на цифровую идентификацию публикаций, присвоив каждой статье идентификатор цифрового объекта (DOI), что значительно ускорило поиск местонахождения статьи в Интернете. В дальнейшем в планах развития журнала «Медицинская радиология и радиационная безопасность» предполагается его издание в англоязычном варианте. С целью получения информации о публикационной активности журнала в марте 2015 года на сайте журнала был помещен счетчик обращений читателей к материалам, выложенным на сайте с 2005 г. по настоящее время. В течение 2015 – 2016 гг. в среднем было не более 100 – 170 обращений в день. Размещение ряда статей, а также электронных версий профильных монографий и сборников в открытом доступе резко увеличило число обращений на сайт журнала до 500 – 800 в день, а общее число посещений сайта к началу 2019 г. составило 527 тыс.
Двухлетний импакт-фактор РИНЦ, по данным на начало 2019 г., составил 0,447, с учетом цитирования из всех источников – 0,614, а пятилетний импакт-фактор РИНЦ – 0,359.
Выпуски журналов
Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Том 67. № 3
Е.М. Иванов, Г.И. Клёнов, В.И. Максимов, В.С. Хорошков,
А.Н. Черных
ПЕРСПЕКТИВЫ РАЗВИТИЯ ПРОТОННОЙ ТЕРАПИИ В РОССИИ
Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт», Москва
Контактное лицо: Алексей Николаевич Черных, e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.
РЕФЕРАТ
Сегодня общепризнано, что протонная терапия (ПЛТ) является одним из самых эффективных методов дистанционного лучевого лечения. Она позволяет обеспечивать условия конформности облучения, недостижимые при использовании самых современных и совершенных средств дистанционной лучевой терапии – медицинских линейных ускорителей, генерирующих пучки электронов и тормозное гамма излучение. Точность совмещения 90–95 %-ой изодозы по всему трехмерному контуру (границам) мишени и градиент спада дозы на границе мишени для протонного излучения заведомо выше, а интегральная доза на здоровые ткани и структуры всегда примерно в два раза ниже, чем при гамма-облучении. Это всегда подтверждается простым сравнением гистограмм доза–объем с использованием конвенциального (гамма, электроны) и протонного излучений, построенных для одних и тех же реальных клинических случаев. Возможность снижения интегральной дозы при ПЛТ представляется особенно важной, поскольку сегодня удается обеспечивать длительный срок жизни онкологических больных, а неприятные последствия (отложенные лучевые реакции и осложнения), обусловленные высокой интегральной дозой, зачастую проявляются через много лет после лечения. Это качество протонного излучения заставляет также считать ПЛТ незаменимым инструментом в детской онкологии.
Длительные клинические исследования, проведенные в 1954–1990 гг. в 10 экспериментальных центрах, в основном, в США (50 % клинического опыта) и в России (30 %) подтвердили изложенные выше преимущества ПЛТ. Эти клинически подтвержденные результаты явились убедительным основанием быстрого сооружения с 1990 г. во всех развитых странах крупных
(на потоки 1 тыс. и более больных в год) клинических центров ПЛТ при онкологических и многопрофильных госпиталях. Сегодня в мире работает 96 таких центров и 38 сооружается. Россия, обладающая громадным опытом в этой проблеме, оказалась вне качественно нового этапа развития ПЛТ. Более того, к 2014 г. все три действующих в стране экспериментальных центра ПЛТ в Москве, Дубне и С.-Петербурге прекратили лечение больных. Таким образом, сегодня страна на 30 лет отстала от общемирового уровня.
В марте 2020 г. Правительство РФ принимает Постановление № 287, в котором предусмотрена Программа ликвидации к 2027 г.
этого отставания. Головной научной организацией по выполнению Программы определен НИЦ «Курчатовский институт», имеющий максимальный опыт, научный потенциал и компетенции в проблеме.
В статье представлены создаваемые и подготавливаемые к тиражированию в рамках Программы объекты, основные цели и этапы выполнения Программы.
Ключевые слова: протонная лучевая терапия (ПЛТ), синхротрон, клинический центр ПЛТ, перспективы развития
Для цитирования: Иванов Е.М., Клёнов Г.И., Максимов В.И., Хорошков В.С., Черных А.Н. Перспективы развития протонной терапии в России // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Т. 67. № 3. С. 41–46. DOI:10.33266/1024-6177-2022-67-3-41-46
Список литературы
1. Хорошков В.С. История и перспективы протонной терапии // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2019. Т.64, № 2. С. 52-60. [Khoroshkov VS. History and Prospects of Proton Therapy. Medical Radiology and Radiation Safety. 2019;64;2:52-60 (In Russ.)]. DOI: 10.12737/article_5ca5fc2765c9f5.02525917.
2. WWW.PTCOG (Proton Therapy Co-Operative Group), Particles Newsletters, 1990, № 5, р.9.
3. WWW.PTCOG (Particles Therapy Co-Operative Group), Online 2020.
The video streams of the meeting (Track 1 to 4)
4. Карпунин В.О., Кленов Г.И., Хорошков В.С. Первый в России специализированный, клинический центр протонной лучевой терапии // Альманах клинической медицины. 2008. № 17-1. С. 316-319. [Karpunin VO, Klenov GI, Khoroshkov VS. Russia’s First Specialized Clinical Center for Proton Beam Therapy. Almanac of Clinical Medicine (In Russ.)].
5. Ломанов М.Ф., Ерохин И.Н., Канчели И.Н., Орлов Д.Г., Рудской И.В. Разработка метода планирования протонного облучения внутриглазных новообразований // Медицинская физика. 2012. № 4. С. 43–51. [Lomanov MF, Erokhin IN, Kancheli IN, Orlov DG, Roudskoy IV. Development of Treatment Planning Methods for Proton Irradiation of Intraocular Neoplasms. Medical Physics. 2012;№ 4:43–51. (In Russ.)].
6. Орлов Д.Г., Владимирова О.М., Ерохин И.Н., Ломанов М.Ф., Саакян С.В., Вальский В.В. и др. Представление модели глаза для использования в системе дозно-анатомического планирования лучевой протонной терапии внутриглазных новообразований // Российский офтальмологический журнал. 2013. Т.6, № 4. С. 48-54. [Orlov DG, Vladimirova OM, Erokhin IN, Lomanov MF, Saakyan SV, Valsky VV, et al. Presenting an eye model for the application in dosage and anatomic planning for proton therapy of intraocular tumors. Russian Ophthalmological Journal. 2013;6(4):48-54. (In Russ.)].
7. Бородин Ю.И., Вальский В.В., Ерохин И.Н., Канчели И.Н., Ломанов М.Ф., Люлевич В.И. и др. Инновационные разработки технических средств для протонной терапии внутриглазных новообразований. Часть I // Российский офтальмологический журнал. 2015. Т.8, № 2. С. 14-20. [Borodin YuI, Valsky VV, Erokhin IN, Kancheli I.N, Lomanov MF, et al. Technical innovations for proton therapy of intraocular neoplasms. Part I. Russian Ophthalmological Journal. 2015;8;2:14-20. (In Russ.)].
8. Бородин Ю.И., Вальский В.В., Ерохин И.Н., Канчели И.Н., Ломанов М.Ф., Люлевич В.И. и др. Инновационные разработки технических средств для протонной терапии внутриглазных новообразований. Часть II // Российский офтальмологический журнал. 2016. Т.9, № 2. С. 11-17. [Borodin YuI, Valsky VV, Erokhin IN, Kancheli IN, Lomanov MF, Lyulevich VI, et al. Technical Innovations for Proton Therapy of Intraocular Neoplasms. Part II. Russian Ophthalmological Journal. 2016;9;2:11-17. (In Russ.)].
9. Минкин Д.Ю., Максимов В.И., Иванов Е.М., Хорошков В.С., Кленов Г.И., Черных А.Н. Онкоофтальмологический комплекс в НИЦ «Курчатовский институт» – ПИЯФ. Исследования и практика в медицине. 2018. Т.5, № 52. С. 181. [Minkin DYu, Maksimov VI, Ivanov EM, Khoroshcov VS, Klenov GI, Chernykh AN. Onco-Ophthalmologic Complex in NRC “Kurchatov Institute” – PNPI. Research’n Practical Medicine Journal. 2018;5;52:181. (In Russ.)].
PDF (RUS) Полная версия статьи
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование. Работа выполнена при поддержке НИЦ «Курчатовский институт» (приказ от 28.10.2021 г. № 2751).
Участие авторов. Cтатья подготовлена с равным участием авторов. Авторы благодарят Д.Г. Орлова за полезные обсуждения и замечания.
Поступила: 17.01.2022. Принята к публикации: 15.03.2022.
Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Том 67. № 3
Е.В. Голуб, В.В. Полькин, Г.Ф. Михайлова,
Т.Г. Шкаврова, В.В. Цепенко, Ф.Е. Севрюков, В.С. Медведев
ОПРЕДЕЛЕНИЕ РАДИОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ БОЛЬНЫХ РАКОМ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПОЛОСТИ РТА ПО ЧАСТОТЕ
КЛЕТОК С ПОЛИСОМИЕЙ ХРОМОСОМ 7 И 11
ПРИ ФРАКЦИОНИРОВАННОЙ ГАММА-ЛУЧЕВОЙ ТЕРАПИИ
Медицинский радиологический научный центр им. А.Ф. Цыба Минздрава России, Обнинск
Контактное лицо: Елена Викторовна Голуб, e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.
РЕФЕРАТ
Цель: Исследовать динамику частоты клеток опухоли с полисомией хромосом 7 и 11 в процессе фракционированной гамма-лучевой терапии больных раком слизистой оболочки полости рта (СОПР).
Материал и методы: Исследование проведено методом флуоресцентной in situ гибридизации на мазках, взятых у 19 пациентов со злокачественной опухоли СОПР до лечения и в процессе гамма-лучевой терапии: после первой суммарной очаговой дозы (СОД) до 18,0 Гр и после второй СОД – до 32,0 Гр. В качестве контроля брали мазки СОПР у 12 клинически здоровых людей.
Результаты: В контрольной группе среднегрупповая частота клеток с полисомией хромосом 7 и 11 составляла 0,7 ± 0,2 % и 0,3 ±
0,1 % соответственно. В группе пациентов с раком СОПР до начала лечения среднегрупповая частота клеток с полисомией хромосомы 7 составила 32,3 ± 4,5 %, а после 1 СОД и 2 СОД – 15,7 ± 2,9 % и 8,0 ± 2,3 % соответственно. Анализ динамики среднегрупповых показателей выявил статистически значимое (р < 0,05) снижение частоты клеток с полисомией хромосомы 7 в процессе лучевой терапии. Среднегрупповая частота клеток с полисомией хромосомы 11 также статистически значимо (р < 0,05) снижалась в процессе терапии: до лечения – 25,8 ± 5,6 %, после 1 СОД и 2 СОД – 12,2 ± 2,4 % и 5,4 ± 0,9 % соответственно. Сравнение полученных значений с соответствующими среднегрупповыми показателями контрольной группы выявило статистически значимое (р < 0,01) превышение по всем показателям. После проведенной фракционированной гамма-лучевой терапии частота клеток с полисомией исследованных хромосом 7 и/или 11 у 16 (84 %) пациентов была статистически значимо ниже (р < 0,05) уровней до лечения, из них у 6 (32 %) пациентов данные показатели снизились до уровней контроля.
У 4 пациентов (21 %) наблюдалось сначала повышение, а затем снижение частоты таких клеток. У 5 (26 %) пациентов на протяжении всего курса гамма-лучевой терапии наблюдалось увеличение частоты клеток с полисомией хромосом 7 и/или 11, либо частота этих клеток сохранялась на уровне, выявленном до лечения.
Заключение: Исследование молекулярно-цитогенетических нарушений в клетках опухоли СОПР пациентов до лечения и после фракционированной гамма-лучевой терапии показало, что полисомия хромосом, являющаяся показателем нестабильности генома, может быть индикатором отклика опухоли на проводимую терапию.
Ключевые слова: рак полости рта, полисомия хромосом, FISH анализ, радиочувствительность, фракционированная гамма-лучевая терапия
Для цитирования: Голуб Е.В., Полькин В.В., Михайлова Г.Ф., Шкаврова Т.Г., Цепенко В.В., Севрюков Ф.Е., Медведев В.С. Определение радиочувствительности пациентов с раком слизистой оболочки полости рта по частоте клеток с полисомией хромосом 7 и 11 при фракционированной гамма-лучевой терапии // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Т. 67. № 3. С. 47–52. DOI:10.33266/1024-6177-2022-67-3-47-52
Список литературы
1. The State of Cancer Care to the Population in Russia in 2019 (Morbidity and Mortality). Ed. Kaprin A.D., Starinskiy V.V., Shakhzadova A.O. Moscow Publ., 2020 (In Russ.). [Состояние онкологической помощи населению в России в 2019 году (заболеваемость и смертность) / Под ред. Каприна АД, Старинского ВВ, Шахзадовой АО. М: МНИОИ им. П.А.Герцена, 2020].
2. Papanikolaou V.S., Kyrodimos E., Tsiambas E., Giotakis E., Psyrri A., Ragos V., Chrysovergis A. Chromosomal Instability in Oral Squamous Cell Carcinoma. J. BUON. 2018;23;6:1580-1582.
3. Sato H., Uzawa N., Takahashi K.I., Myo K., Ohyama Y., Amagasa T. Prognostic Utility of Chromosomal Instability Detected by Fluorescence in Situ Hybridization in Fine-Needle Aspirates from Oral Squamous Cell Carcinomas. BMC Cancer. 2010;10:182. doi: 10.1186/1471-2407-10-182.
4. Alterio D., Marvaso G., Maffini F., Gandini S., Choocca S., Ferrari A. Role of EGFR as Prognostic Factor in Head and Neck Cancer Patients Treated with Surgery and Postoperative Radiotherapy: Proposal of a New Approach Behind the EGFR Overexpression. Med. Oncol. 2017;34;6:107. doi: 10.1007/s12032-017-0965-7.
5. Nikitakis N.G., Pentenero M., Georgaki M., et all. Molecular Markers Associated with Development and Progression of Potentially Premalignant Oral Epithelial Lesions: Current Knowledge and Future Implications. Oral. Surg. Oral. Med. Oral. Pathol Oral Radiol. 2018;125;6:650-669. doi: 10.1016/j.oooo.2018.03.012.
6. Sia J., Szmyd R., Hau E., Gee H,E. Molecular Mechanisms of Radiation-Induced Cancer Cell Death: a Primer. Front. Cell. Dev. Biol. 2020;8;41. DOI: 10.3389/fcell.2020.00041.
7. Dando I., Cordani M., Pozza D.E., Biondani G., Donadelli M., Palmieri M. Antioxidant Mechanisms and ROS-Related Micro-RNAs in Cancer Stem Cells. Oxid. Med. Cell. Longev. 2015;2015:425708. doi: 10.1155/2015/425708.
8. Chang L., Graham P., Hao J., Ni J., Deng J., Bucci J., et al. Cancer Stem Cells and Signaling Pathways in Radioresistance. Oncotarget. 2016;7;10:11002-11017. DOI: 10.18632/oncotarget.6760.
9. Eriksson D., Löfroth P.O., Johansson L., Riklund K.A., Stigbrand T. Cell Cycle Disturbances and Mitotic Catastrophes in HeLa Hep2 Cells Following 2.5 to 10 Gy of Ionizing Radiation. Clin. Cancer. Res. 2007;13;18 Pt 2:5501s-5508s. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-07-0980.
10. Lee S.Y., Jeong E.K., Ju M.K., Jeon H.M., Kim M.Y., Kim C.H., et al. Induction of Metastasis, Cancer Stem Cell Phenotype and Oncogenic Metabolism in Cancer Cells by Ionizing Radiation. Mol. Cancer. 2017;16;1:10. doi: 10.1186/s12943-016-0577-4.
11. Kavanagh B.D., Lin P.S., Chen P., Schmidt-Ullrich RK. Radiation-Induced Enhanced Proliferation of Human Squamous Cancer Cells in Vitro: a Release from Inhibition by Epidermal Growth Factor. Clin. Cancer Res. 1995;1;12:1557-1562.
12. Chien H.T., Cheng S.D., Liao C.T., Wang H.M., Huang S.F. Amplification of the EGFR and CCND1 Are Coordinated and Play Important Roles in the Progression of Oral Squamous Cell Carcinomas. Cancers (Basel). 2019;11;6:760. doi: 10.3390/cancers11060760.
13. Fujimichi Y., Hamada N. Ionizing Irradiation Not Only Inactivates Clonogenic Potential in Primary Normal Human Diploid Lens Epithelial Cells But Also Stimulates Cell Proliferation in a Subset of this Population. PLoS ONE. 2014;9;5:e98154. doi: 10.1371/journal.pone.0098154.
14. Oliveira-Junior R.J., Goulart L.R., Bastos L.M., Alves D.D., dos Santos e Silva S.V., Morelli S. Contributions of Cytogenetics to Cancer Research. Biosci. J. 2014;30;1:245-260.
PDF (RUS) Полная версия статьи
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.
Участие авторов. Cтатья подготовлена с равным участием авторов.
Поступила: 17.01.2022. Принята к публикации: 15.03.2022.
Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Том 67. № 3
Д.В. Багдасарова1, А.Д. Зикиряходжаев1-3, Ф.Н. Усов1,
Е.В. Хмелевский1, А.Н. Герасимов2, И.С. Дуадзе2,
Д.Ш. Джабраилова1
РЕКОНСТРУКТИВНО-ПЛАСТИЧЕСКИЕ ОПЕРАЦИИ
С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ЭНДОПРОТЕЗА В СОЧЕТАНИИ
С ЛУЧЕВОЙ ТЕРАПИЕЙ У БОЛЬНЫХ ПЕРВИЧНО-ОПЕРАБЕЛЬНЫМ РАКОМ МОЛОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ (СT1-2N0-1M0)
1Московский научный исследовательский онкологический институт имени П.А. Герцена, г. Москва, Россия.
2 Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Минздрава России, г. Москва, Россия.
3 Российский университет дружбы народов, г. Москва, Россия.
Контактное лицо: Багдасарова Дарья Валерьевна, e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.
РЕФЕРАТ
Цель: определить показания к проведению ЛТ у больных первично-операбельным раком молочной железы (РМЖ)
(СT1-2N0-1M0) после КсМЭ/ПкМЭ с использованием эндопротеза.
Материалы и методы: в работе проанализированы результаты лечения 203 больных, которым были выполнены операции на молочной железе в объеме КсМЭ (58 случаев (28,6 %)) или ПкМЭ (145 случаев (71,4 %)) с одномоментной реконструкцией силиконовым эндопротезом в составе комбинированного или комплексного лечения в период с января 2008 по март 2018 гг. Лучевая терапия проводилась 98 (48,2 %) больным на реконструированную молочную железу и на зоны регионарного лимфооттока. Медиана наблюдения составила 51 месяц (95 % ДИ от 49 до 53 месяцев), средняя длительность наблюдения – 60,3 ± 1,9 месяцев.
Результаты: наличие метастатического поражения аксиллярных лимфатических узлов (р=0,008) и лимфоваскулярной инвазии (р=0,048) коррелирует с ухудшением бессобытийной выживаемости. Достоверных различий в частотах рецидивов (р=0,734) и прогрессирований (р=0,432) в группах больных с ЛТ и без нее получено не было. Однако в связи с включением в исследование изначально благоприятной группы больных и получением небольшого количества неблагоприятных исходов, было получено, что ЛТ изменяет риск развития рецидива болезни не более чем, в 3–4 раза.
Заключение: Дополнительная ЛТ позволила получить в группе неблагоприятного прогноза те же результаты, что и в группе благоприятного прогноза. Предварительный вывод о не влиянии ЛТ на результаты лечения группы благоприятного прогноза должен быть валидирован при иследовании с большим числом наблюдений.
Ключевые слова: рак молочной железы, одномоментная реконструкция молочной железы, лучевая терапия, подкожная мастэктомия, кожесохранная мастэктомия, имплантаты
Для цитирования: Багдасарова Д.В., Зикиряходжаев А.Д., Усов Ф.Н., Хмелевский Е.В., Герасимов А.Н., Дуадзе И.С.,
Джабраилова Д.Ш. Реконструктивно-пластические операции с использованием эндопротеза в сочетании с лучевой терапией у больных первично-операбельным раком молочной железы (СT1-2N0-1M0) // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Т. 67. № 3. С. 53–58. DOI: 10.33266/1024-6177-2022-67-3-53-58
Список литературы
1. Каприн А.Д., Старинский В.В., Шахзадова А.О. Злокачественные новообразования в России в 2019 г. (заболеваемость и смертность). 2020: 252 c. [Kaprin A.D., Starinskii V.V., Shakhzadova A.O. Zlokachestvennye novoobrazovaniya v Rossii v 2019 g. (zabolevaemost’ i smertnost’). 2020: 252 c. (In Russ.).]
2. Toth Bryant A. LP. Modified Skin Incisions for Mastectomy. Plastic and Reconstructive Surgery. Plast Reconstr Surg. 1991 Jun;87(6):1048-53
3. Carlson GW, Styblo TM, Lyles RH, Bostwick J, Murray DR, Staley CA, et al. Local Recurrence After Skin-Sparing Mastectomy : Tumor Biology or Surgical Conservatism ? Annals of surgical oncology. 10. 108-12.
4. Uriburu JL, Vuoto HD, Cogorno L, Isetta JA, Candas G, Imach GC, et al. Local recurrence of breast cancer after skin-sparing mastectomy following core needle biopsy: Case reports and review of the literature. Breast J. 2006;12(3):194–8.
5. Torresan RZ, Santos CC Dos, Okamura H, Alvarenga M. Evaluation of residual glandular tissue after skin-sparing mastectomies. Ann Surg Oncol. 2005;12(12):1037–44.
6. Gomez C, Shah C, McCloskey S, Foster N, Vicini F. The Role of Radiation Therapy after Nipple-Sparing Mastectomy. Ann Surg Oncol 21, 2237–2244 (2014).
7. Laronga C, Kemp B, Johnston D, Robb GL, Singletary SE. The incidence of occult nipple-areola complex involvement in breast cancer patients receiving a skin-sparing mastectomy. Ann Surg Oncol. 1999;6(6):609–13.
8. Marta GN, Poortmans P, Barros AC De, Filassi JR, Junior RF, Audisio RA, et al. Multidisciplinary international survey of post-operative radiation therapy practices after nipple-sparing or skin-sparing mastectomy. Eur J Surg Oncol. 2017;
9. Agarwal S, Agarwal J. Radiation Delivery in Patients Undergoing Therapeutic Nipple-Sparing Mastectomy. Ann Surg Oncol. 2015 Jan;22(1):46-51.
10. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology. Breast Cancer. 2020.
11.Клинические рекомендации Российского общества онкомаммологов (РООМ) по диагностике и лечению рака молочной железы. «Золотой стандарт диагностики и лечения РМЖ 2020». 2020: 151 с. http://www.abvpress.ru/project/www.abvpress.ru/KR_ROOM_2020.pdf [Klinicheskie rekomendacii Rossijskogo obshchestva onkomammologov (ROOM) po diagnostike i lecheniyu raka molochnoj zhelezy. «Zolotoj standart diagnostiki i lecheniya RMZH 2020». 2020: 151 s. (In Russ.).]
12.Клинические рекомендации Министерства здравоохранения Российской Федерации «Рак молочной железы». 2020: 84 с. https://democenter.nitrosbase.com/clinrecalg5/API.ashx?op=GetClinrecPdf&id=379 [Klinicheskie rekomendacii Ministerstva zdravoohraneniya Rossijskoj Federacii «Rak molochnoj zhelezy». 2020: 84 s. (In Russ.).]
13.Новикова Д. С., Попкова Т. В., Герасимов А. Н., Волков А. В., Насонов Е. Л. Взаимосвязь кардиоваскулярных ФР с ригидностью артериальной стенки у женщин с высокой активностью ревматоидного артрита. Рациональная фармакотерапия в кардиологии. 2012,8 (6):756-65. [Novikova D. S., Popkova T. V., Gerasimov A. N., Volkov A. V., Nasonov E. L. Vzaimosvyaz‘ kardiovaskulyarnyh FR s rigidnost‘yu arterial‘noj stenki u zhenshchin s vysokoj aktivnost‘yu revmatoidnogo artrita. Racional’naya farmakoterapiya v kardiologii. 2012,8 (6):756-65. (In Russ.).]
PDF (RUS) Полная версия статьи
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.
Участие авторов. Cтатья подготовлена с равным участием авторов.
Поступила: 11.04.2022. Принята к публикации: 11.05.2022.
Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Том 67. № 3
А.В. Озерская1, 2, С.Ю. Липайкин2, К.В. Белугин2,
Н.А. Токарев2, Н.Г. Чанчикова2, М.С. Ларькина3, 4,
Е.В. Подрезова3, М.В. Белоусов3, 4, М.С. Юсубов1, 3, 4
МЕТОДЫ РАДИОФТОРИРОВАНИЯ:
ИСТОРИЧЕСКИЙ ОЧЕРК И СОВРЕМЕННОЕ СОСТОЯНИЕ
1Национальный исследовательский Томский политехнический университет, Томск
2Федеральный Сибирский научно-клинический центр ФМБА России, Красноярск
3Научно-исследовательский центр (НИЦ) «Онкотераностика»,
Национальный исследовательский Томский политехнический университет, Томск
4Сибирский государственный медицинский университет, Томск
Контактное лицо: Анастасия Витальевна Озерская, e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.
СОДЕРЖАНИЕ
1. Введение
2. Методы радиофторирования прекурсоров для получения 18F-РФЛП
3. Электрофильное радиофторирование
4. Нуклеофильное радиофторирование
5. Альтернативные методы радиофторирования
6. Заключение
7. Список литературы
Ключевые слова: радиофармпрепараты, радиофторирование, фтор-18, электрофильные реакции, нуклеофильные реакции, хелатирование
Для цитирования: Озерская А.В., Белугин К.В., Липайкин С.Ю., Токарев Н.А., Чанчикова Н.Г., Ларькина М.С., Подрезо-
ва Е.В., Белоусов М.В., Юсубов М.С. Методы радиофторирования: исторический очерк и современное состояние // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Т. 67. № 3. С. 59–66. DOI:10.33266/1024-6177-2022-67-3-59-66
Список литературы
1. Theodoropoulos A.S., Gkiozos I., Kontopyrgias G., Charpidou A., Kotteas E., Kyrgias G., et al. Modern Radiopharmaceuticals for Lung Cancer Imaging with Positron Emission Tomography/Computed Tomography Scan: A Systematic Review. SAGE Open Med. 2020;8.
2. Mattos D.M., Gomes M.L., Freitas R.S., Moreno S., Lima-Filho G.L., Paula E.F., et al. Which Are the most Used Radionuclides in the Pet and in the Spect Techniques in the World? J. Label Compd Radiopharm. 2012;44;S1:S841-843.
3. Giammarile F., Castellucci P., Dierckx R., Lobato E.E., Farsad M., Hustinx R., et al. Non-FDG PET/CT in Diagnostic Oncology: a Pictorial Review. European J. Hybrid Imaging. 2019;3;20.
4. Vallabhajosula S. (18)F-Labeled Positron Emission Tomographic Radiopharmaceuticals in Oncology: an Overview of Radiochemistry and Mechanisms of Tumor Localization. Semin Nucl Med. 2007;37;6:400-419.
5. Chernov V.I., Medvedeva A.A., Sinilkin I.G., Zeltchan R.V., Bragina O.D. Development of Radiopharmaceuticals for Radionuclide Diagnostics in Oncology. Meditsinskaya vizualizatsiya = Medical Visualization. 2016;2:63-66. (In Russ.). [Чернов В.И., Медведева А.А., Синилкин И.Г., Зельчан Р.В., Брагина О.Д. Разработка радиофармпрепаратов для радионуклидной диагностики в онкологии // Медицинская визуализация. 2016. № 2. С. 63-66].
6. Coenen H.H. Fluorine-18 Labeling Methods: Features and Possibilities of Basic Reactions. Ernst Schering Res Found Workshop. 2007;62:15-50.
7. Krzyczmonik A., Keller T., Kirjavainen A.K., Lahdenpohja S. Use of SF6 for the Production of Electrophilic 18f-Fluorination Reagents. J. Fluor Chem. 2017;204:90-97.
8. Blessing G., Coenen H.H., Franken K., Qaim S.M. Production of [18F]F2, H18F and 18Faq− Using the 20Ne(d, α)18F Process. Int. J. Radiat Appl Instrum Appl Radiat Isot. 1986;37;11:1135-1139.
9. Forsback S., Solin O. Post-Target Produced [18F]F2 in the Production of PET Radiopharmaceuticals. Radiochim Acta. 2014;103;3:219-226.
10. Bergman J., Solin O. Fluorine-18-Labeled Fluorine Gas for Synthesis of Tracer Molecules. Nucl Med. Biol. 1997;24;7:677-683.
11. Ido T., Wan C.N., Casella V., Fowler J.S., Wolf A.P., Reivich M., et al. Labeled 2-Deoxy-D-Glucose Analogs. 18F-Labeled 2-Deoxy-2-Fluoro-D-Glucose, 2-Deoxy-2-Fluoro-D-Mannose and 14C-2-Deoxy-2-Fluoro-D-Glucose. J. Label Compd Radiopharm. 1978;14:175-183.
12. Luxen A., Perlmutter M., Bida G.T., Van Moffaert G., Cook J.S., Satyamurthy N., et al. Remote, Semiautomated Production of 6-[18F]Fluoro-L-Dopa for Human Studies with PET. Int. J. Rad. Appl. Instrum A. 1990;41;3:275-281.
13. Beuthien-Baumann B., Bredow J., Burchert W., Fuchtner F., Bergmann R., Alheit H.D., et al. 3-O-Methyl-6-[18F]Fluoro-L-DOPA and Its Evaluation in Brain Tumour Imaging. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2003;30;7:1004-1008.
14. Füchtner F., Steinbach J. Efficient Synthesis of the 18F-labelled 3-O-methyl-6-[18F]Fluoro-L-DOPA. Appl Radiat Isot. 2003;58;5:575-578.
15. Nurmi E., Ruottinen H.M., Kaasinen V., Bergman J., Haaparanta M., Solin O., et al. Progression in Parkinson’s Disease: a Positron Emission Tomography Study with a Dopamine Transporter Ligand [18F]CFT. Ann. Neurol. 2000;47;6:804-806.
16. Laakso A., Bergman J., Haaparanta M., Vilkman H., Solin O., Syvälahti E., et al. Decreased Striatal Dopamine Transporter Binding in Vivo in Chronic Schizophrenia. Schizophr Res. 2001;52;1-2:115-120.
17. Lerman O., Tor Y., Rozen S. Acetyl Hypofluorite as a Taming Carrier of Elemental Fluorine for Novel Electrophilic Fluorination of Activated Aromatic Rings. J. Org. Chem. 1981;46;22:4629-4631.
18. Shiue C.Y., Salvadori P.A., Wolf A.P., Fowler J.S., MacGregor R.R. A New Improved Synthesis of 2-Deoxy-2-[18F]Fluoro-d-Glucose from 18F-Labeled Acetyl Hypofluorite. J. Nucl. Med. 1982;23;10:899-903.
19. Jewett D.M., Potoki J.F., Ehrenkaufer R.E. A Gassolid-Phase Microchemical Method for the Synthesis of Acetyl Hypofluorite. J. Fluorine Chem. 1984;24:477-484.
20. Bida G.T., Satyamurthy N., Barrio J.R. The Synthesis of 2-[F-18]Fluoro-2-Deoxy-D-Glucose Using Glycals: a Reexamination. J. Nucl. Med. 1984;25;12:1327-1334.
21. Oberdorfer F., Hofmann E., Maier-Borst W. Preparation of 18 F-Labelled N-Fluoropyridinium Triflate. J. Label Compd Radiopharm. 1988;25;9:999-1005.
22. Teare H., Robins E.G., Arstad E., Luthra S.K., Gouverneur V. Synthesis and Reactivity of [18F]-N-Fluorobenzenesulfonimide. Chem Commun (Camb). 2007;23:2330-2332.
23. Teare H., Robins E.G., Kirjavainen A.K., Forsback S., Sandford G., Solin O., et al. Radiosynthesis and Evaluation of [18F]Selectfluor Bis(Triflate). Angew Chem Int. Ed. Engl. 2010;49;38:6821-6824.
24. Satyamurthy N., Bida G.T., Phelps M.E., Barrio J.R. N-[18F]Fluoro-N-Alkylsulfonamides: Novel Reagents for Mild and Regioselective Radiofluorination. Int. J. Rad. Appl. Instrum A. 1990;41;8:733-738.
25. Keller T., Krzyczmonik A., Forsback S., Picon F.R.L., Kirjavainen A.K., Takkinen J., et al. Radiosynthesis and Preclinical Evaluation of [(18)F]F-DPA, A Novel Pyrazolo[1,5a]Pyrimidine Acetamide TSPO Radioligand, in Healthy Sprague Dawley Rats. Mol. Imaging Biol. 2017;19;5:736-745.
26. Liang T., Neumann C.N., Ritter T. Introduction of Fluorine and Fluorine-Containing Functional Groups. Angew Chem Int. Ed. Engl. 2013;52;32:8214-8264.
27. Keller T., Lopez-Picon F.R., Krzyczmonik A., Forsback S., Kirjavainen A.K., Takkinen J.S., et al. [(18)F]F-DPA for the Detection of Activated Microglia in a Mouse Model of Alzheimer’s Disease. Nucl Med. Biol. 2018;67:1-9.
28. Orlovskaya V., Fedorova O., Nadporojskii M., Krasikova R. A Fully Automated Azeotropic Drying Free Synthesis of O-(2-[18F]Fluoroethyl)-L-Tyrosine ([18F]FET) Using Tetrabutylammonium Tosylate. Appl. Radiat. Isot. 2019;152:135-139.
29. Yu S. Review of F-FDG Synthesis and Quality Control. Biomed Imaging Interv J. 2006;2;4:e57.
30. Yusubov M.S., Larkina M.S., Drygunova L.A. The Use of Polyvalent Iodine Compouds in the Production of [18F]Fluorine-Containing Tracers for Positron Emission Tomography. Vestnik Nauki Sibiri = Siberian Journal of Science. 2011;1;1:648-655 (In Russ.). [Юсубов М.С., Ларькина М.С., Дрыгунова Л.А. Использование соединений поливалентного иода в получении [18F]фторсодержащих трейсеров для позитронной эмиссионной томографии // Вестник науки Сибири. 2011. Т.1, № 1. С. 648-655].
31. Mu L., Fischer C., Holland J., Becaud J., Schubiger P.A., Schibli R., et al. 18F-Radiolabeling of Aromatic Compounds Using Triarylsulfonium Salts. Eur. J. Org. Chem. 2012;2012;5:889-892.
32. Rotstein B.H., Stephenson N.A., Vasdev N., Liang S.H. Spirocyclic Hypervalent Iodine(III)-Mediated Radiofluorination Of Non-Activated and Hindered Aromatics. Nat. Commun. 2014;5:4365.
33. Preshlock S., Calderwood S., Verhoog S., Tredwell M., Huiban M., Hienzsch A., et al. Enhanced Copper-Mediated (18)F-Fluorination of Aryl Boronic Esters Provides Eight Radiotracers for PET Applications. Chem Commun (Camb). 2016;52;54:8361-8364.
34. Gamache R.F., Waldmann C., Murphy J.M. Copper-Mediated Oxidative Fluorination of Aryl Stannanes with Fluoride. Org. Lett. 2016;18;18:4522-4525.
35. Fowler J.S., Ido T. Initial and Subsequent Approach for the Synthesis of 18FDG. Semin Nucl Med. 2002;32;1:6-12.
36. Peck M., Pollack H.A., Friesen A., Muzi M., Shoner S.C., Shankland E.G., et al. Applications of PET Imaging with the Proliferation Marker [18F]-FLT. Q J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2015;59;1:95-104.
37. Suehiro M., Vallabhajosula S., Goldsmith S.J., Ballon D.J. Investigation of the Role of the Base in the Synthesis of [18F]FLT. Appl. Radiat. Isot. 2007;65;12:1350-1358.
38. Kim D.W., Ahn D.S., Oh Y.H., Lee S., Kil H.S., Oh S.J., et al. A New Class of SN2 Reactions Catalyzed by Protic Solvents: Facile Fluorination for Isotopic Labeling of Diagnostic Molecules. J. Am. Chem. Soc. 2006;128;50:16394-16397.
39. Chaly T., Dhawan V., Kazumata K., Antonini A., Margouleff C., Dahl J.R., et al. Radiosynthesis of [18F] N-3-Fluoropropyl-2-Beta-Carbomethoxy-3-Beta-(4-Iodophenyl) Nortropane and the First Human Study with Positron Emission Tomography. Nucl. Med. Biol. 1996;23;8:999-1004.
40. Krasikova R.N. Robotic Synthesis of Radiopharmaceuticals for positron emission tomography. Radiokhimiya = Radiochemistry. 1998;40;1:352-360 (In Russ.). [Красикова Р.Н. Роботизированный синтез радиофармпрепаратов для позитронной эмиссионной томографии // Радиохимия. 1998. Т.40, № 1. С. 352-360].
41. Pauwelyn G., Vlerick L., Dockx R., Verhoeven J., Dobbeleir A., Bosmans T., et al. Kinetic Analysis of [(18)F] Altanserin Bolus Injection in the Canine Brain Using PET Imaging. BMC Vet. Res. 2019;15;1:415.
42. Lemaire C., Cantineau R., Guillaume M., Plenevaux A., Christiaens L. Fluorine-18-Altanserin: a Radioligand for the Study of Serotonin Receptors with PET: Radiolabeling and in Vivo Biologic Behavior in Rats. J. Nucl. Med. 1991;32;12:2266-2272.
43. Ding Y.S., Liang F., Fowler J.S., Kuhar M.J., Carroll F.I. Synthesis of [18F]Norchlorofluoroepibatidine and its N-Methyl Derivative: New PET Ligands for Mapping Nicotinic Acetylcholine Receptors. J. Label Compd Radiopharm. 1997;39;10:827-832.
44. Yusubov M.S., Yoshimura A., Zhdankin V.V. Iodonium Ylides in Organic Synthesis. Arkivoc. 2016;342-374.
45. Zhang M.R., Kumata K., Suzuki K. A Practical Route for Synthesizing a PET Ligand Containing [18F]Fluorobenzene Using Reaction of Diphenyliodonium Salt with [18F]F-. Tetrahedron Lett. 2007;48;49:8632-8635.
46. Hodolic M., Topakian R., Pichler R. (18)F-Fluorodeoxyglucose and (18)F-Flumazenil Positron Emission Tomography in Patients with Refractory Epilepsy. Radiol Oncol. 2016;50;3:247-253.
47. Moon B.S., Kil H.S., Park J.H., Kim J.S., Park J., Chi D.Y., et al. Facile Aromatic Radiofluorination of [18F]Flumazenil from Diaryliodonium Salts with Evaluation of their Stability and Selectivity. Org. Biomol Chem. 2011;9;24:8346-8355.
48. McBride W.J., Sharkey R.M., Karacay H., D’Souza C.A., Rossi E.A., Laverman P., et al. A Novel Method of 18F Radiolabeling for PET. J. Nucl. Med. 2009;50;6:991-998.
49. McBride W.J., D’Souza C.A., Sharkey R.M., Karacay H., Rossi E.A., Chang C.H., et al. Improved 18F Labeling of Peptides with a Fluoride-Aluminum-Chelate Complex. Bioconjug Chem. 2010;21;7:1331-1340.
50. Fersing C., Bouhlel A., Cantelli C., Garrigue P., Lisowski V., Guillet B. A Comprehensive Review of Non-Covalent Radiofluorination Approaches Using Aluminum [(18)F]Fluoride: Will [(18)F]AlF Replace (68)Ga for Metal Chelate Labeling? Molecules. 2019;24;16.
51. Alonso Martinez L.M., Harel F., Nguyen Q.T., Letourneau M., D’Oliviera-Sousa C., Meloche B., et al. Al[(18)F]F-Complexation of DFH17, a NOTA-Conjugated Adrenomedullin Analog, for PET Imaging of Pulmonary Circulation. Nucl. Med. Biol. 2018;67:36-42.
52. Wan W., Guo N., Pan D., Yu C., Weng Y., Luo S., et al. First Experience of 18F-Alfatide in Lung Cancer Patients Using a New Lyophilized Kit for Rapid Radiofluorination. J. Nucl. Med. 2013;54;5:691-698.
53. Lee E., Kamlet A.S., Powers D.C., Neumann C.N., Boursalian G.B., Furuya T., et al. A Fluoride-derived electrophilic late-stage fluorination reagent for PET imaging. Science. 2011;334(6056):639-42.
54. Scroggie K.R., Perkins M.V., Chalker J.M. Reaction of [18F]Fluoride at Heteroatoms and Metals for Imaging of Peptides and Proteins by Positron Emission Tomography. Front Chem. 2021;9:472.
55. Vedejs E., Chapman R.W., Fields S.C., Lin S., Schrimpf M.R. Conversion of Arylboronic Acids into Potassium Aryltrifluoroborates: Convenient Precursors of Arylboron Difluoride Lewis Acids. J. Org. Chem. 1995;60;10:3020-3027.
56. Pourghiasian M., Liu Z., Pan J., Zhang Z., Colpo N., Lin K.S., et al. (18)F-AmBF3-MJ9: a Novel Radiofluorinated Bombesin Derivative for Prostate Cancer Imaging. Bioorg Med. Chem. 2015;23;7:1500-1506.
57. Lau J., Pan J., Rousseau E., Uribe C.F., Seelam S.R., Sutherland B.W., et al. Pharmacokinetics, Radiation Dosimetry, Acute Toxicity and Automated Synthesis of [(18)F]AmBF3-TATE. EJNMMI Res. 2020;10.1:25.
58. Ting R., Harwig C.W., Lo J., Li Y., Adam M.J., Ruth T.J., et al. Substituent Effects on Aryltrifluoroborate Solvolysis in Water: Implications for Suzuki-Miyaura Coupling and the Design of Stable (18)F-Labeled Aryltrifluoroborates for Use in PET Imaging. J. Org. Chem. 2008;73;12:4662-4670.
59. Marans N.S., Sommer F.C., Whitmore J. Preparation of Organofluorosilanes Using Aqueous Hydrofluoric Acid.
J. Am. Chem. Soc. 1951;73:5127-5130.
60. Mu L., Hohne A., Schubiger P.A., Ametamey S.M., Graham K., Cyr J.E., et al. Silicon-Based Building Blocks for One-Step 18F-Radiolabeling of Peptides for PET Imaging. Angew Chem Int. Ed. Engl. 2008;47;26:4922-4925.
PDF (RUS) Полная версия статьи
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование. Исследование финансировалось Министерством науки и высшего образования Российской Федерации (075-15-2019-1925).
Участие авторов. Cтатья подготовлена с равным участием авторов.
Поступила: 17.01.2022. Принята к публикации: 15.03.2022.
Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Том 67. № 3
П.Д. Ремизов
СОВРЕМЕННЫЕ МЕДИЦИНСКИЕ РАДИОНУКЛИДЫ
ДЛЯ ИММУНО-ПЭТ
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, Москва
Контактное лицо: Павел Дмитриевич Ремизов, e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.
СОДЕРЖАНИЕ
Введение
Современные мишени для визуализации и векторы-переносчики
Иммуно-ПЭТ
Радионуклиды для иммуно-ПЭТ
Иммуно-ПЭТ с 89Zr
Наработка позитронно-излучающих нуклидов для иммуно-ПЭТ
Заключение
Ключевые слова: позитронно-эмиссионная томография, медицинские радионуклиды, 124I, 89Zr, иммуно-ПЭТ, моноклональные антитела
Для цитирования: Ремизов П.Д. Современные медицинские радионуклиды для иммуно-пэт // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2022. Т. 67. № 3. С. 67–74. DOI:10.33266/1024-6177-2022-67-3-67-74
Список литературы
1. Cherry S., Jones T., Karp J., Qi J., Moses W., Badawi R. Total-Body PET: Maximizing Sensitivity to Create New Opportunities for Clinical Research and Patient Care. Journal of Nuclear Medicine. 2017;59;1:3-12. doi:10.2967/jnumed.116.184028
2. Delbeke D., Segall G. Status of and Trends in Nuclear Medicine in the United States. Journal of Nuclear Medicine. 2011;52;Suppl.2:24S-28S. doi:10.2967/jnumed.110.085688.
3. Human Health Campus – Database & Statistics. Humanhealth.iaea.org. https://humanhealth.iaea.org/HHW/DBStatistics/IMAGINEMaps.html. Published 2021. Accessed July 13, 2021.
4. Lee S., Burvenich I., Scott A. Novel Target Selection for Nuclear Medicine Studies. Semin Nucl. Med. 2019;49;5:357-368. doi:10.1053/j.semnuclmed.2019.06.004.
5. Lee S., Xie J., Chen X. Peptides and Peptide Hormones for Molecular Imaging and Disease Diagnosis. Chem Rev. 2010;110;5:3087-3111. doi:10.1021/cr900361p.
6. Van Dongen G., Visser G., Lub‐de Hooge M., de Vries E., Perk L. Immuno‐PET: A Navigator in Monoclonal Antibody Development and Applications. Oncologist. 2007;12;12:1379-1389. doi:10.1634/theoncologist.12-12-1379.
7. Köhler G., Milstein C. Continuous Cultures of Fused Cells Secreting Antibody of Predefined Specificity. Nature. 1975;256;5517:495-497. doi:10.1038/256495a0.
8. Teillaud J. Engineering of Monoclonal Antibodies and Antibody-Based Fusion Proteins: Successes and Challenges. Expert Opin. Biol. Ther. 2005;5;sup1:S15-S27. doi:10.1517/14712598.5.1.s15.
9. Reddy S., Robinson M. ImmunoPET in Cancer Models. Semin. Nucl. Med. 2010;40;3:182–189. doi:10.1053/j.semnuclmed.2009.12.004.
10. Adams G., Schier R., McCall A., Simmons H., Horak E., Alpaugh R., et al. High Affinity Restricts the Localization and Tumor Penetration of Single-Chain Fv Antibody Molecules. Cancer Res. 2001;61;12:4750-4755.
11. Adams G., Tai M., McCartney J., Marks J., Stafford W., Houstonet L., et al. Avidity-Mediated Enhancement of in Vivo Tumor Targeting by Single-Chain Fv Dimers. Clin. Cancer Res. 2006;12;5:1599–1605. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-05-2217.
12. Williams L., Wu A., Yazaki P., Raubitschek A., Shively J., Wong J. Numerical Selection of Optimal Tumor Imaging Agents with Application to Engineered Antibodies. Cancer Biother Radiopharm. 2001;16;1:25–35. doi: 10.1089/108497801750095989.
13. McKnight B., Viola-Villegas N. 89Zr-ImmunoPET Companion Diagnostics and Their Impact in Clinical Drug Development. Journal of Labelled Compounds and Radiopharmaceuticals. 2018;61;9:727-738. doi:10.1002/jlcr.3605.
14. Chernyaev A., Borshchegovskaya P., Nikolaeva A., Varzar’ S., Samosadnyi V., Krusanov G. Radiation Technology in Medicine: Part 2. Using Isotopes in Nuclear Medicine. Moscow University Physics Bulletin. 2016;71;4:339-348. doi:10.3103/s0027134916040044.
15. Kraeber-Bodéré F., Rousseau C., Bodet-Milin C., Mathieu C., Guérard F., Frampas E., et al. Tumor Immunotargeting Using Innovative Radionuclides. Int. J. Mol. Sci. 2015;16;2:3932-3954. doi:10.3390/ijms16023932.
16. Boswell C., Brechbiel M.. Development of Radioimmunotherapeutic and Diagnostic Antibodies: an Inside-Out View. Nucl. Med. Biol. 2007;34;7:757-778. doi:10.1016/j.nucmedbio.2007.04.001.
17. Altai M., Membreno R., Cook B., Tolmachev V., Zeglis B.M. Pretargeted Imaging and Therapy. J. Nucl. Med. 2017;58;10:1553-1559. doi:10.2967/jnumed.117.189944.
18. Stéen E.J.L., Edem P.E., Nørregaard K., Jørgensen J., Shalgunov V., Kjaer A., et al. Pretargeting in Nuclear Imaging and Radionuclide Therapy: Improving Efficacy of Theranostics and Nanomedicines. Biomaterials. 2018;179:209-245. doi:10.1016/j.biomaterials.2018.06.021.
19. Wu A.M., Yazaki P.J., Tsai Sw., Nguyen K., Anderson A., McCarthy D., et al. High-Resolution MicroPET Imaging of Carcinoembryonic Antigen-Positive Xenografts by Using a Copper-64-Labeled Engineered Antibody Fragment. Proc. Natl. Acad. Sci USA. 2000;97;15:8495-8500. doi:10.1073/pnas.150228297.
20. Nayak T., Brechbiel M. 86Y Based PET Radiopharmaceuticals: Radiochemistry and Biological Applications. Med. Chem. 2011;7;5:380-388. doi:10.2174/157340611796799249.
21. Vandenberghe S. Three-Dimensional Positron Emission Tomography Imaging with 124I and 86Y. Nucl. Med. Commun. 2006;27;3:237-245. doi:10.1097/01.mnm.0000199476.46525.2c.
22. Pentlow K. Quantitative Imaging of Yttrium-86 with PET The Occurrence and Correction of Anomalous Apparent Activity in High Density Regions. Clinical Positron Imaging. 2000;3;3:85-90. doi:10.1016/s1095-0397(00)00046-7.
23. Fraker P., Speck J.Jr. Protein and Cell Membrane Iodinations with a Sparingly Soluble Chloroamide, 1,3,4,6-Tetrachloro-3a,6a-Diphrenylglycoluril. Biochem Biophys Res. Commun. 1978;80;4:849-857. doi:10.1016/0006-291x(78)91322-0.
24. Cyclotron Produced Radionuclides: Emerging Positron Emitters For Medical Applications: 64Cu And 124I. Radioisotopes and Radiopharmaceuticals Reports No. 1. Vienna, International Atomic Energy Agency, 2016.
25. Abou D., Ku T., Smith-Jones P. In Vivo Biodistribution and Accumulation of 89Zr in Mice. Nucl. Med. Biol. 2011;38;5:675-681. doi:10.1016/j.nucmedbio.2010.12.011.
26. Heskamp S., Raavé R., Boerman O., Rijpkema M., Goncalves V., Denat F. 89Zr-Immuno-Positron Emission Tomography in Oncology: State-of-the-Art 89Zr Radiochemistry. Bioconjug Chem. 2017;28;9:2211-2223. doi:10.1021/acs.bioconjchem.7b00325.
27. Chomet M., van Dongen GAMS, Vugts D.J. State of the Art in Radiolabeling of Antibodies with Common and Uncommon Radiometals for Preclinical and Clinical Immuno-PET. Bioconjug Chem. 2021;32;7:1315-1330. doi:10.1021/acs.bioconjchem.1c00136.
28. Cascini G., Niccoli Asabella A., Notaristefano A., Restuccia A., Ferrari C., Rubini D., et al. 124 Iodine: a Longer-Life Positron Emitter Isotope-New Opportunities in Molecular Imaging. Biomed Res. Int. 2014;2014:672094. doi:10.1155/2014/672094.
29. Bensch F., Brouwers A., Lub-de Hooge M., de Jong J., van der Vegt B., Sleijfer S., et al. 89Zr-Trastuzumab PET Supports Clinical Decision Making in Breast Cancer Patients, when HER2 Status Cannot be Determined by Standard Work Up. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2018;45;13:2300-2306. doi:10.1007/s00259-018-4099-8.
30. Dehdashti F., Wu N., Bose R., Naughton M., Ma C., Marquez-Nostra B., et al. Evaluation of [89Zr]trastuzumab-PET/CT in Differentiating HER2-Positive from HER2-Negative Breast Cancer. Breast Cancer Res. Treat. 2018;169;3:523-530. doi:10.1007/s10549-018-4696-z.
31. Dijkers E., Kosterink J., Rademaker A., Perk L., van Dongen G., Bart J., de Jong J., et al. Development and Characterization of Clinical-Grade 89Zr-Trastuzumab for HER2/neu ImmunoPET Imaging. J. Nucl. Med. 2009;50;6:974-981. doi:10.2967/jnumed.108.060392.
32. Gaykema S., Brouwers A., Lub-de Hooge M., Pleijhuis R., Timmer-Bosscha H., Pot L., et al. 89Zr-Bevacizumab PET Imaging in Primary Breast Cancer. J. Nucl. Med. 2013;54;7:1014-1018. doi:10.2967/jnumed.112.117218.
33. Ulaner G., Lyashchenko S., Riedl C., Ruan S., Zanzonico P., Lake D., et al. First-in-Human Human Epidermal Growth Factor Receptor 2-Targeted Imaging Using 89Zr-Pertuzumab PET/CT: Dosimetry and Clinical Application in Patients with Breast Cancer. J. Nucl. Med. 2018;59;6:900-906. doi:10.2967/jnumed.117.202010.
34. O’Donoghue J., Lewis J., Pandit-Taskar N., Fleming S., Schöder H., Larson S., et al. Pharmacokinetics, Biodistribution, and Radiation Dosimetry for 89Zr-Trastuzumab in Patients with Esophagogastric Cancer. J, Nucl, Med. 2018;59;1:161-166. doi:10.2967/jnumed.117.194555.
35. Pandit-Taskar N., O’Donoghue J., Beylergil V., Lyashchenko S., Ruan S., Solomonet S., et al. ⁸⁹Zr-huJ591 Immuno-PET Imaging in Patients with Advanced Metastatic Prostate Cancer. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2014;41;11:2093-2105. doi:10.1007/s00259-014-2830-7.
36. McCarthy W., Shefer R., Klinkowstein R., Bass L., Margeneau W., Cutler C., et al. Efficient Production of High Specific Activity 64Cu Using a Biomedical Cyclotron. Nucl. Med. Biol. 1997;24;1:35-43. doi:10.1016/s0969-8051(96)00157-6.
37. Retracted: The Copper Radioisotopes: A Systematic Review with Special Interest to 64Cu [retraction of: Biomed Res Int. 2014;2014:786463]. BioMed Res. Int. 2018;2018:3860745. doi:10.1155/2018/3860745.
38. Ikotun O., Lapi S. The Rise of Metal Radionuclides in Medical Imaging: Copper-64, Zirconium-89 and Yttrium-86. Future Med Chem. 2011;3;5:599-621. doi:10.4155/fmc.11.14.
39. Alves F., Alves V., Do Carmo S., Neves A., Silva M., Abrunhosa A. Production of Copper-64 and Gallium-68 with a Medical Cyclotron Using Liquid Targets. Mod. Phys. Lett A. 2017;32;17:1740013. doi:10.1142/s0217732317400132.
40. Rajec P., Csiba V., Leporis M., Štefečka M., Pataky E., Reich M., et al. Preparation and Characterization of Nickel Targets for Cyclotron Production of 64Cu. J. Radioanal Nucl. Chem. 2010;286;3:665-670. doi:10.1007/s10967-010-0736-9.
41. Reischl G., Rösch F., Machulla H. Electrochemical Separation and Purification of Yttrium-86. Radiochimica Acta. 2002;90;4:225-228. doi:10.1524/ract.2002.90.4_2002.225.
42. Yoo J., Tang L., Perkins T., Rowland D., Laforest R., Lewis J., et al. Preparation of High Specific Activity 86Y Using A Small Biomedical Cyclotron. Nucl. Med. Biol. 2005;32;8:891-897. doi:10.1016/j.nucmedbio.2005.06.007.
43. Avila-Rodriguez M., Nye J., Nickles R. Production and Separation of Non-Carrier-Added 86Y from Enriched 86Sr Targets. Appl. Radiat. Isot. 2008;66;1:9-13. doi:10.1016/j.apradiso.2007.07.027.
44. Koehler L., Gagnon K., McQuarrie S., Wuest F. Iodine-124: a Promising Positron Emitter for Organic PET Chemistry. Molecules. 2010;15;4:2686-2718. doi:10.3390/molecules15042686.
45. Synowiecki M., Perk L., Nijsen J. Production of Novel Diagnostic Radionuclides in Small Medical Cyclotrons. EJNMMI Radiopharm Chem. 2018;3;1:3. doi:10.1186/s41181-018-0038-z.
46. Wang F., Liu T., Li L., Guo X., Duan D., Liu Z., et al. Production, Quality Control of Next-Generation PET Radioisotope Iodine-124 and Its Thyroid Imaging. J. Radioanal Nucl. Chem. 2018;318;3:1999-2006. doi:10.1007/s10967-018-6277-3.
47. Soppera N., Dupont E., Flemming M. JANIS Book of Deuteron Induced Cross Sections: Comparison of Evaluated and Experimental Data from ENDF/B-VIII.0, TENDL-2019 and EXFOR. 2020.
48. Dabkowski A., Paisey S., Talboys M., Marshall C. Optimization of Cyclotron Production for Radiometal of Zirconium 89. Acta. Physica Polonica A. 2015;127;5:1479-1482. doi:10.12693/aphyspola.127.1479.
49. Verel I., Visser G., Boellaard R., Stigter-van W., Snow G., van Dongen G. 89Zr Immuno-PET: Comprehensive Procedures for the Production of 89Zr-Labeled Monoclonal Antibodies. J. Nucl. Med. 2003;44;8:1271-1281.
50. Siikanen J., Tran T., Olsson T., Strand S., Sandell A. A Solid Target System with Remote Handling of Irradiated Targets for PET Cyclotrons. Appl. Radiat. Isot. 2014;94:294-301. doi:10.1016/j.apradiso.2014.09.001.
51. Ellison P., Valdovinos H., Graves S., Barnhart T., Nickles R. Spot-Welding Solid Targets for High Current Cyclotron Irradiation. Appl. Radiat. Isot. 2016;118:350-353. doi:10.1016/j.apradiso.2016.10.010.
52. Pandey M., Bansal A., Engelbrecht H., Byrne J., Packard A., DeGrado T. Improved Production and Processing of 89Zr Using a Solution Target. Nucl. Med. Biol. 2016;43;1:97-100. doi:10.1016/j.nucmedbio.2015.09.007.
53. DeGrado T., Pandey M., Byrne J. Solution Target for Cyclotron Production of Radiometals. Google Patents. 2017.
54. Oehlke E., Hoehr C., Hou X., Hanemaayer V., Zeisler S., Adam M., et al. Production of Y-86 and Other Radiometals for Research Purposes Using a Solution Target System. Nucl. Med. Biol. 2015;42;11:842-849. doi:10.1016/j.nucmedbio.2015.06.005.
55. Zheltonozhsky V., Zheltonozhskaya M., Savrasov A., Belyshev S., Chernyaev A., Yatsenko V. Studying the Activation of 177Lu in (γ, рxn) Reactions. Bulletin of the Russian Academy of Sciences: Physics. 2020;84:923-928. doi:10.3103/s1062873820080328.
56. Hovhannisyan G., Bakhshiyan T., Dallakyan R. Photonuclear Production of the Medical Isotope 67Cu. Nuclear Instruments and Methods in Physics Research Section B: Beam Interactions with Materials and Atoms. 2021;498:48-51. doi:10.1016/j.nimb.2021.04.016.
57. Belousov A.I., Zheltonozhskaya M.V., Lykova Ye.N., Rem-
izov P.D., CHernyayev A.P., Yatsenko V.N. Research of 131Cs Radionuclide Production for Brachytherapy with Photonuclear Method. Meditsinskaya Radiologiya i Radiatsionnaya Bezopasnost = Medical Radiology and Radiation Safety. 2019;64;
1:53-57. doi:10.12737/article_5c55fb4d218e20.76419134.
(In Russ.). [Белоусов А.И., Желтоножская М.В., Лыкова Е.Н., Ремизов П.Д., Черняев А.П., Яценко В.Н. Исследование возможности получения радионуклида 131Cs для брахитерапии фотоядерным способом // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2019. Т.64, № 1. С. 53-57].
58. Loveless C., Radford L., Ferran S., Queern S., Shepherd M., Lapi S. Photonuclear Production, Chemistry, and in Vitro Evaluation of the Theranostic Radionuclide 47Sc. EJNMMI Res. 2019;9;42. doi:10.1186/s13550-019-0515-8.
59. Chernyaev A., Kolyvanova M., Borshchegovskaya P. Radiation Technology in Medicine: Part 1. Medical Accelerators. Moscow University Physics Bulletin. 2015;70;6:457-465. doi:10.3103/s0027134915060090.
60. Zheltonozhskaya M., Zheltonozhsky V., Lykova E., Chernyaev A., Iatsenko V. Production of Zirconium-89 by Photonuclear Reactions. Nuclear Instruments and Methods in Physics Research Section B: Beam Interactions with Materials and Atoms. 2020;470:38-41. doi:10.1016/j.nimb.2020.03.002.
PDF (RUS) Полная версия статьи
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование. Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта N 20-315-90124. Исследование выполнено в рамках Междисциплинарной научно-образовательной школы Московского университета «Фотонные и квантовые технологии. Цифровая медицина».
Участие авторов. Cтатья подготовлена с равным участием авторов.
Поступила: 17.01.2022. Принята к публикации: 15.03.2022.