НАУЧНЫЙ И ИНФОРМАЦИОННО-АНАЛИТИЧЕСКИЙ ЖУРНАЛ

ISSN 1024-6177 (Print), ISSN 2618-9615 (Online)

О ЖУРНАЛЕ

Научный журнал «Медицинская радиология и радиационная безопасность» (Мedical Radiology and Radiation Safety), ISSN 1024-6177 основан в январе 1956 г. (до 30 декабря 1993 г. выходил под названием «Медицинская радиология», ISSN 0025-8334). В 2018 году журнал получил Online ISSN: 2618-9615 и был зарегистрирован как электронное сетевое издание в Роскомнадзоре 29 марта 2018 года. На его страницах публикуются оригинальные научные статьи по вопросам радиобиологии, радиационной медицины, радиационной безопасности, лучевой терапии, ядерной медицины, а также научные обзоры; в целом журнал имеет более 30 рубрик и представляет интерес для специалистов, работающих в областях медицины¸ радиационной биологии, эпидемиологии, медицинской физики и техники. С 01.07.2008 г. Издатель журнала – ФГБУ «Государственный научный центр Российской Федерации – Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна» ФМБА России. Учредитель с 1956 г. - Министерство здравоохранения РФ, а с 2008 г. по настоящее время – Федеральное медико-биологическое агентство.

Членами редакционной коллегии журнала являются ученые – специалисты, работающие в области радиационной биологии и медицины, радиационной защиты, радиационной эпидемиологии, радиационной онкологии, лучевой диагностики и терапии, ядерной медицины и медицинской физики. В состав редакционной коллегии входят: академики РАН, члены-корреспонденты РАН, доктора медицинских наук, профессора, кандидаты и доктора биологических, физико-математических наук и технических наук. Состав редколлегии постоянно пополняется за счет авторитетных специалистов, работающих в ближнем и дальнем зарубежье.

Периодичность выхода в свет – 6 номеров в год, объемом – 13,5 усл. печатных листов или 88 печатных страниц и тиражом 1000 экземпляров. Журнал имеет идентичную по содержанию полнотекстовую электронную версию, которая одновременно с печатным вариантом и цветными рисунками размещается на сайтах Научной Электронной Библиотеки (НЭБ) и сайте журнала. Распространение по подписке через Агентство «Роспечать» по договору № 7407 от 16 июня 2006 г., через индивидуальных покупателей и коммерческие структуры. Публикация статей бесплатная.

Журнал входит в Перечень ведущих российских рецензируемых научных журналов ВАК, рекомендованных для опубликования результатов диссертационных исследований. С 2008 г. журнал представлен в Интернете и индексируется в базе данных РИНЦ, а также входит в Перечень Russian Science Citation Index (RSCI), размещенной на платформе Web of Science. С 2 февраля 2018 года журнал «Медицинская радиология и радиационная безопасность" индексируется в мультидисциплинарной библиографической и реферативной базе SCOPUS.

Краткие электронные версии статей журнала с 2005 г. находятся в открытом доступе в разделе "Выпуски журнала". С 2011 года в открытом доступе представлены все выпуски журнала целиком, а с 2016 года - полнотекстовые версии научных статей. Полный текст остальных статей любого номера, начиная с 2005 г. могут приобрести подписчики только через НЭБ. Редакция журнала «Медицинская радиология и радиационная безопасность» в соответствии с договором с НЭБ поставляет ей в полном объеме выпускаемую продукцию с 2005 г. по настоящее время.

Основным рабочим языком журнала является русский, дополнительный язык – английский, который используется для написания названий статей, сведений об авторах, аннотаций, ключевых слов, списка литературы.

С 2017 г. журнал «Медицинская радиология и радиационная безопасность» перешел на цифровую идентификацию публикаций, присвоив каждой статье идентификатор цифрового объекта (DOI), что значительно ускорило поиск местонахождения статьи в Интернете. В дальнейшем в планах развития журнала «Медицинская радиология и радиационная безопасность» предполагается его издание в англоязычном варианте. С целью получения информации о публикационной активности журнала в марте 2015 года на сайте журнала был помещен счетчик обращений читателей к материалам, выложенным на сайте с 2005 г. по настоящее время. В течение 2015 – 2016 гг. в среднем было не более 100 – 170 обращений в день. Размещение ряда статей, а также электронных версий профильных монографий и сборников в открытом доступе резко увеличило число обращений на сайт журнала до 500 – 800 в день, а общее число посещений сайта к началу 2019 г. составило 527 тыс.

Двухлетний импакт-фактор РИНЦ, по данным на начало 2019 г., составил 0,447, с учетом цитирования из всех источников – 0,614, а пятилетний импакт-фактор РИНЦ – 0,359.

Выпуски журналов

Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2018. Том 63. № 6. С. 65–70

РАДИАЦИОННАЯ ФИЗИКА, ТЕХНИКА И ДОЗИМЕТРИЯ

DOI: 10.12737/article_5c0e7486915d55.10064971

А.О. Лисовская1,2, А.А. Логинова1, К.А. Галич2, В.Н. Беляев2, А.В. Нечеснюк1

Оценка индекса дозы при использовании протоколов сканирования компьютерной томографии в коническом пучке для пациентов детского возраста

1. Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии имени Дмитрия Рогачева Минздрава РФ, Москва. E-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра. ;
2. Национальный исследовательский ядерный университет «МИФИ», Москва

А.О. Лисовская – медицинский физик, аспирант; А.А. Логинова – старший медицинский физик;
К.А. Галич – студентка; В.Н. Беляев – д.ф.-м.н., проф.; А.В. Нечеснюк – зав. отделением лучевой терапии, к.м.н.

Реферат

Цель: Оценить индексы дозы в фантомах различных размеров при стандартных режимах компьютерной томографии в коническом пучке (конКТ).

Материал и методы: Использована методика, основанная на абсолютных и относительных измерениях дозового распределения для протоколов сканирования конКТ. Измерения абсолютной дозы проводились на периферии и в центре фантома FREEPOINT (CIRS) с помощью камеры фармеровского типа FC65-P для каждого из исследуемых протоколов сканирования. Фантом FREEPOINT высотой 20 см, шириной 30 см и длиной 30 см использовался для имитации грудной клетки и таза большого размера, внутренний вкладыш диаметром 16 см – для таза малого размера и для головы–шеи. С помощью двумерной матрицы детекторов I’mRT MatriXX (IBA) измеряли профили дозы, полученные результаты обрабатывали по программе OmniPro-I’mRT, а затем рассчитывали индексы дозы DLP (произведение длина–доза).

Результаты: Были определены индексы дозы для пяти протоколов, соответствующих трем областям сканирования (голова–шея, грудная клетка и таз). Для протоколов сканирования области головы и шеи Head and Neck S20 и Head and Neck M20 значения индексов дозы составили 51,82 и 90,25 мГр×см соответственно. Наименьший индекс дозы получили для протокола головы и шеи Fast Head and Neck S20 (13,28 мГр×см).
Было установлено, что размер сканируемого объекта сильно влияет на величину индекса дозы и, как следствие, на итоговую дозовую нагрузку на пациента. Так, для протокола области грудной клетки Chest M20 при сканировании фантома малого размера индекс дозы составил 305,42 мГр×см, а фантома большого размера – 187,53 мГр×см. Аналогичные результаты были получены для протокола сканирования тазовой области Pelvis M15. Максимальный индекс дозы был получен для фантома малого размера – 846,93 мГр×см, в то время как индекс дозы для фантома большого размера составил 563,79 мГр×см.
Было показано, что для педиатрических пациентов необходимо использовать несколько протоколов, соответствующих областям сканирования. Использование протокола Pelvis M15 для тазовой области при сканировании головы может увеличить дозу в 96 раз по сравнению со стандартным низкодозным протоколом Fast Head and Neck S20.

Заключение: Рутинное использование конКТ в клинической практике требует осмысленного выбора протокола сканирования исходя из полученных результатов оценки индекса дозы.

Ключевые слова: лучевая терапия с контролем по изображениям (ЛТКИ), компьютерная томография в коническом пучке излучения, протокол сканирования, индекс дозы, дозовая нагрузка

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

  1. Islam M., Purdie T., Norrlinger B. et. al. Patient dose from kilovoltage cone beam computed tomography imaging in radiation therapy // Med. Phys. 2006. Vol. 33. P. 1573–1582. DOI: 10.1118/1.2198169.
  2. Хоружик С.А., Михайлов А.Н. Доза облучения при компьютерно-томографических исследованиях: дозиметрические параметры, измерение, способы снижения, радиационный риск // Вестник рентгенол. и радиол. 2007. № 6. С. 53–62.
  3. Alaei P., Spezi E. Imaging dose from cone beam computed tomography in radiation therapy. // Physica Medica. 2015. Vol. 31. № 7. P. 647–658. DOI: 10.1016/j.ejmp.2015.06.003.
  4. Ding G., Munro P., Pawlowski J. et. al. Reducing radiation exposure to patients from kV-CBCT imaging // Radiother. Oncol. 2010. Vol. 97. № 3. P. 585–592. DOI: 10.1016/j.radonc.2010.08.005.
  5. Brenner D. Induced second cancers after prostate-cancer radiotherapy: no cause for concern // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2006. Vol. 65. P. 637–639. DOI: 10.1016/j.radonc.2010.08.005.
  6. Murphy M.-J., Balter J., BenComo J. et al. The management of imaging dose during image-guided radiotherapy: Report of AAPM Task Group 75 // Med. Phys. 2007. Vol. 34. P. 4041-4063. DOI: 10.1118/1.2775667.
  7. Календер В. Компьютерная томография. Основы, техника, качество изображений и области клинического использования. – М.: Техносфера, 2006. 344 с.
  8. Marks L., Yorke E., Jackson A. et al. Use of normal tissue complication probability models in the clinic // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2010. Vol. 76. № 3. P. 10–19. DOI: 10.1016/j.ijrobp.2009.07.1754 .
  9. Marchant T., Joshi K. Comprehensive Monte-Carlo study of patient doses from cone-beam CT imaging in radiotherapy // J. Radiol. Prot. 2017. Vol. 37. № 1. P. 13–30. DOI: 10.1088/1361-6498/37/1/13.
  10. Groves A., Owen K., Courtney H. et al. 16-detector multislice CT: dosimetry estimation by TLD measurement compared with Monte-Carlo simulation // Brit. J. Radiol. 2004. Vol. 77. P. 662–665. DOI: 10.1259/bjr/48307881.
  11. Amer А., Marchant Т., Sykes J.R. et. al. Imaging doses from the Elekta Synergy X-ray cone beam CT system // Brit. J. Radiol. 2007. Vol. 80. P. 476–482. DOI: 10.1259/bjr/80446730.
  12. Buckley J., Wilkinson D., Malaroda A., Metcalf P. Investigation of the radiation dose from cone beam CT for image guided radiotherapy: a comparison of methodologies // J. Appl. Clin. Med. Phys. 2018. Vol. 19. № 1. P. 174–183. DOI: 10.1002/acm2.12239.
  13. Chair C.-M., Coffey C., DeWerd L. et al. AAPM protocol for 40–300 kV X-ray beam dosimetry in radiotherapy and radiobiology // Med. Phys. 2001. Vol. 28. № 6. P. 868–893. DOI: 10.1118/1.1374247.
  14. Dixon R., Anderson A., Bakalyar D. et al. Comprehensive Methodology for the Evaluation of Radiation Dose in X-Ray Computed Tomography. Report of AAPM Task Group. No. 111. 2010. P. 20740–23846.
  15. Scandurra D., Lawford C. A dosimetry technique for measuring kilovoltage cone-beam CT dose on a linear accelerator using radiotherapy equipment // J. Appl. Clin. Med. Phys. 2014. Vol. 15. № 4. P. 80–91. DOI: 10.1120/jacmp.v15i4.4658.
  16. Liao X., Wang Y., Lang J. et. al. Variation of patient imaging doses with scanning parameters for linac-integrated kilovoltage cone beam CT // Bio-Med. Mater. Engin. 2015. Vol. 26. P. 1659–1667. DOI: 10.3233/BME-151465.
  17. Song W., Kamath S., Ozawaet. S. et. al. A dose comparison study between XVI and OBI CBCT systems. // Med. Phys. 2008. Vol. 35. № 2. P. 480–486. DOI: 10.1118/1.2825619.
  18. Ding G., Alaei P., Curran B. et al. Image guidance doses to radiotherapy patients // Med. Phys. 2018. Vol. 45. № 5. P. 84–99. DOI: 10.1002/mp.12824.
  19. 2.6.1.2944–11. Контроль эффективных доз облучения пациентов при проведении медицинских рентгенологических исследований. 2011.

Для цитирования: Лисовская А.О., Логинова А.А., Галич К.А., Беляев В.Н., Нечеснюк А.В. Оценка индекса дозы при использовании протоколов сканирования компьютерной томографии в коническом пучке для пациентов детского возраста // Мед. радиология и радиационная безопасность. 2018. Т. 63. № 6. С. 65–70.

DOI: 10.12737/article_5c0e7486915d55.10064971

PDF (RUS) Полная версия статьи

Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2018. Том 63. № 6. С. 71–81

ОБЗОР

DOI: 10.12737/article_5c0eb50d2316f4.12478307

М.В. Васин1, В.Ю. Соловьев2, В.Н. Мальцев2, И.Е. Андрианова2, С.Н. Лукьянова2

Первичный радиационный стресс, воспалительная реакция и механизм ранних пострадиационных репаративных процессов в облученных тканях

1. Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования Минздрава РФ, Москва. E-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра. ;
2. Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России, Москва

М.В. Васин – проф. кафедры, д.м.н., проф.; В.Ю. Соловьев – д.б.н., к.т.н., зав. лаб.; В.Н. Мальцев – г.н.с., д.б.н., проф.; И.Е. Андрианова – в.н.с., д.м.н.; С.Н. Лукьянова – г.н.с., д.б.н., проф.

Реферат

Высвобождаемые из клеточных компартментов в результате процессов радиолиза под действием ионизирующего излучения высокомобильные группы белков, поврежденные ядерные и митохондриальные ДНК, внеклеточный АТФ и окисленные низкой плотности липопротеиды вызывают через паттерн распознающих рецепторов стресс-сигнальную активацию в облученных тканях с запуском каскада р53 и NF-κB провоспалительных путей, ведущих к экспрессии провоспалительных генов, стимулирующих синтез цитокинов семейства ИЛ‑1.
Чрезмерная активация провоспалительных путей под действием радиационного стресса ограничивается синтезом противовоспалительных цитокинов: ИЛ‑4, ИЛ‑10, ИЛ‑11, ИЛ‑13, а также антагонистами рецептора ИЛ‑1 и фактором TGF-β. Г‑КСФ и МГ‑КСФ. Индуцированные действием провоспалительных цитокинов, они обладают противовоспалительными и антиапоптическими свойствами, способными понижать содержание провоспалительных цитокинов ИЛ‑6 и ФНО-a.

Глюкокортикоиды участвуют в регуляции первичного радиационного стресса, подавляя чрезмерную экспрессию генов провоспалительных цитокинов. По обратной связи при повышении уровня ИЛ‑1 стимулируется секреция кортикостерона. В свою очередь, адренергическая стимуляция способна повышать экспрессию гена ИЛ‑1β.

Механизм радиационного апоптоза стволовых клеток реализуется через путь p53-Puma, который блокирует взаимодействие антиапоптических белков Bcl-2 с проапоптическими белками BAX и BAK. После высвобождения из митохондрий цитохрома С и апоптоз-индуцирующего фактора происходит активация эффекторных каспаз: через каспазу 9 каспазы 3, 6 и 7, и окончательное разрушение клетки.
Путь Wnt является критически важным для регенерации тканей после лучевого поражения. Потенциал регенеративного ответа кроветворной ткани на лучевое поражение зависит от содержания катенина и способности Wnt-пути стимулировать восстановление костного мозга после облучения. Мезенхиальные стволовые клетки (МСК) костного мозга играют большую роль в пострадиационной регенерации кроветворной ткани. Основное их действие на регенерацию костного мозга осуществляется через рецепторы TLR2 and TLR4.

Мобилизация кроветворных стволовых клеток связана с высвобождением из костного мозга протеаз, включая нейтрофильную эластазу и катепсин G, а также матрикс металлопротеиназы-9.

Противолучевые свойства экзогенного ИЛ‑1 не исчерпываются только повышенной продукции Г‑КСФ и ГМ-КСФ. Большую роль в противолучевой защите играет реакция на воздействие ИЛ‑1 в виде обратной связи с продукцией антиапоптических и противовоспалительных факторов. Первичный радиационный стресс ограничивает продолжительность радиомитигирующего эффекта ИЛ‑1 1–2 ч при его применении после облучения.

Ключевые слова: первичный радиационный стресс, провоспалительные цитокины, интерлейкин-1β, антивоспалительные цитокины, гранулоцит-колонии стимулирующий фактор, пострадиационное восстановление кроветворения

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

  1. Гребенюк А.Н., Легеза В.И. Противолучевые свойства интерлейкина-1. – СПб.: Фолиант. 2012. 216 с.
  2. Wu S.G., Miyamoto T. Radioprotection of the intestinal crypts of mice by recombinant human interleukin-1 alpha // Radiat. Res. 1990. Vol. 123. № 1. P. 112–115.
  3. Ильин Л.А., Рудный Н.М., Суворов Н.Н и соавт. Индралин – радиопротектор экстренного действия. Противолучевые свойства, фармакология, механизм действия, клиника. – М. 1994. 436 с.
  4. Васин М.В., Ушаков И.Б., Ковтун В.Ю. и соавт. Характеристика противолучевых свойств радиопротектора Б-190 при его применении после облучения // Радиац. биол. Радиоэкол. 2008. Т. 48. № 6. С. 730–733.
  5. Васин М.В., Ушаков И.Б., Ковтун В.Ю. и соавт. Противолучевые свойства радиопротектора экстренного действия индралина при его применении после облучения в условиях частичного экранирования живота крыс // Радиац. биол. Радиоэкол. 2008. Т. 48. № 2. С. 199–201.
  6. Gluzman-Poltorak Z., Vainstein V., Basile L.A. Recombinant interleukin-12, but not granulocyte-colony stimulating factor, improves survival in lethally irradiated nonhuman primates in the absence of supportive care: evidence for the development of a frontline radiation medical countermeasure // Amer. J. Hematol. 2014. Vol. 89. № 9. P. 868–873.
  7. Рождественский Л.М., Шлякова Т.Г., Щеголева Р.А. и соавт. Оценка противолучевой лечебной эффективности рекомбинантного тромбопоэтина на собаках по критериям показателей кроветворения и выживаемости // Радиац. биол. Радиоэкол. 2013. Т. 53. № 3. С. 280–289.
  8. Гребенюк А.Н., Зацепин В.В., Аксенова Н.В. и соавт. Влияние последовательного применения препарата Б-190 и интерлейкина-1β на выживаемость и костномозговое кроветворение облученных мышей // Радиац. биол. Радиоэкол. 2010. Т. 50. № 4. С. 175–180.
  9. Jang S.S., Park W.Y. The combined effects of amifostine and Interleukin 1 beta (IL-1beta) on radiation-induced gastrointestinal and hematopoietic injury // Cancer Res. Treat. 2003. Vol. 35. № 6. P. 528–532.
  10. Лукашин Б.П., Софронов Г.А. Радиозащитное действие цистамина и гепарина в опытах на мышах с различной резистентностью // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1996. Т. 121. № 5. С. 544–546.
  11. Venereau E., Ceriotti C., Bianchi M.E. DAMPs from cell death to new life // Front. Immunol. 2015. Vol. 6. P. 422.
  12. Васин М.В., Чернов Ю.Н. Влияние облучения на циркулирующие иммунные комплексы в крови крыс // Радиобиология. 1991. Т. 31. № 3. С. 365–367.
  13. Schaue D., Kachikwu E.L., McBride W.H. Cytokines in radiobiological responses: a review // Radiat. Res. 2012. Vol. 178. № 6. P. 505–523.
  14. Xiao M. The role of proinflammatory cytokine interleukin-18 in radiation injury // Health Phys. 2016. Vol. 111. № 2. P. 212–217.
  15. Kim S.J., Choe H., Lee G.J. et al. Ionizing radiation induces innate immune responses in macrophages by generation of mitochondrial reactive oxygen species // Radiat. Res. 2017. Vol. 187. № 1. P. 32–41.
  16. Linard C., Marquette C., Mathieu J. et al. Acute induction of inflammatory cytokine expression after gamma-irradiation in the rat: effect of an NF-kappaB inhibitor // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2004. Vol. 58. № 2. P. 427–434.
  17. Cohen I., Rider P., Vornov E. et al. IL-1α is a DNA damage sensor linking genotoxic stress signaling to sterile inflammation and innate immunity // Sci. Rep. 2015. Vol. 5. P. 147–156.
  18. Carta S., Lavieri R., Rubartelli A. Different members of the IL‐1 family come out in different ways: DAMPs vs. cytokines? // Front. Immunol. 2013. Vol. 4. P. 123 –130.
  19. Stoecklein V.M., Osuka A., Ishikawa S. et al. Radiation exposure induces inflammasome pathway activation in immune cells // J. Immunol. 2015. Vol. 194. P. № 3. P. 1178–1189.
  20. Vince J.E., Silke J. The intersection of cell death and inflammasome activation // Cell Mol. Life Sci. 2016. Vol. 73. № 11–12. P. 2349–2367.
  21. de Vasconcelos N.M., Van Opdenbosch N., Lamkanfi M. Inflammasomes as polyvalent cell death platforms // Cell Mol. Life Sci. 2016. Vol. 73. № 11–12. P. 2335–2347.
  22. Sharma D., Kanneganti T.D. The cell biology of inflammasomes: Mechanisms of inflammasome activation and regulation // J. Cell Biol. 2016. Vol. 213. № 6. P. 617–629.
  23. Moroni M., Lombardini E., Salber R. et al. Hematological changes as prognostic indicators of survival: similarities between Göttingen minipigs, humans, and other large animal models // PLoS ONE. 2011. Vol. 6. e25210.
  24. Chwee J.Y., Khatoo M., Tan N.Y.J., Gasser S. Apoptotic cells release IL1 receptor antagonist in response to genotoxic stress // Cancer Immunol. Res. 2016. Vol. 4. № 4. P. 294–302.
  25. Shonai T., Adachi M., Sakata K. et al. MEK/ERK pathway protects ionizing radiation-induced loss of mitochondrial membrane potential and cell death in lymphocytic leukemia cells // Cell Death Differ. 2002. Vol. 9. № 9. P. 963–971.
  26. Di Maggio F.M., Minafra L., Forte G.I. et al. Portrait of inflammatory response to ionizing radiation treatment // J. Inflamm. (Lond). 2015. Vol. 12. P. 14–19.
  27. Redondo-Castro E., Cunningham C., Miller J. et al. Interleukin-1 primes human mesenchymal stem cells towards an anti-inflammatory and pro-trophic phenotype in vitro // Stem Cell Res. Ther. 2017. Vol. 8. № 1. P. 79. DOI: 10.1186/s13287-017-0531-4.
  28. Kim J.S., Yang M., Lee C.G. et al. In vitro and in vivo protective effects of granulocyte colony-stimulating factor against radiation-induced intestinal injury // Arch. Pharm. Res. 2013. Vol. 36. № 10. P. 1252–1261. DOI: 10.1007/s12272-013-0164-9.
  29. Singh V.K., Fatanmi O.O., Singh P.K., Whitnall M.H. Role of radiation-induced granulocyte colony-stimulating factor in recovery from whole body gamma-irradiation // Cytokine. 2012. Vol. 58. № 3. P. 406–4014. DOI: 10.1016/j.cyto.2012.03.011.
  30. Beetz A., Messer G., Oppel T. et al. Induction of interleukin 6 by ionizing radiation in a human epithelial cell line: control by corticosteroids // Int. J. Radiat. Biol. 1997. Vol. 72. № 1. P. 33–43.
  31. Morrissey P.J., Charrier K., Alpert A., L. Bressler L. In vivo administration of IL-1 induces thymic hypoplasia and increased levels of serum corticosterone. [in 3 h] // J. Immunol. 1988. Vol. 141. № 5. P. 1456–1463.
  32. Петров Р.В. Роль гормонов и медиаторов в функционировании иммунной системы // Вест. АМН СССР. 1980. № 8. C. 3–9.
  33. Bodey B. Neuroendocrine influence on thymic haematopoiesis via the reticulo-epithelial cellular network // Expert Opin. Biol. Ther. 2002. Vol. 6. № 1. P. 57–72.
  34. von Vietinghoff S., Ley K. Homeostatic regulation of blood neutrophil counts // J. Immunol. 2008. Vol. 181. № 8. P. 5183–5188.
  35. Marković L. Interaction involving the thymus and the hypothalamus-pituitary axis, immunomodulation by hormones // Srp. Arh. Celok. Lek. 2004. Vol. 132. № 5–6. P. 187–193.
  36. Bodey B. Thymic reticulo-epithelial cells: key cells of neuroendocrine regulation // Expert Opin. Biol. Ther. 2007. Vol. 7. № 7. P. 939–949.
  37. Безин Г.И., Мороз Б.Б. Факторы, контролирующие рециркуляцию стволовых клеток. Модификация действия эндогенных глюкокортикоидов на миграцию КОЕ у Т‑дефицитных мышей // Радиобиология. 1983. Т. 23. № 3. С. 328–331.
  38. Shao L., Luo Y., Zhou D. Hematopoietic stem cell injury induced by ionizing radiation // Antioxid. Redox Signal. 2014. Vol. 20. № 9. P. 1447–1462. DOI: 10.1089/ars.2013.5635.
  39. Meng A., Wang Y., Brown S.A. et al. Ionizing radiation and bisulfan inhibit murine bone marrow cell hematopoietic function via apoptosis-dependent and -independent mechanisms // Exp. Hematol. 2003. Vol. 31. № 12. P. 1348–1356.
  40. Halestrap A.P. Calcium, mitochondria and reperfusion injury: a pore way to die // Biochem. Soc. Trans. 2006. Vol. 34. Pt. 2. P. 232–237.
  41. Green D.R., Kroemer G. The pathophysiology of mitochondrial cell death // Science. 2004. Vol. 305. № 5684. P. 626–629.
  42. Michels J., Johnson P.W., Packham G. Mcl-1 // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2005. Vol. 37. № 2. P. 267–271.
  43. Germain M., Milburn J., Duronio V. MCL-1 inhibits BAX in the absence of MCL-1/BAX Interaction // J. Biol. Chem. 2008. Vol. 283. № 10. P. 384–392.
  44. Giorgi C., Missiroli S., Patergnani S. et al. Mitochondria-associated membranes: composition, molecular mechanisms, and physiopathological implications // Antioxid. Red. Signaling. 2015. Vol. 22. № 12. P. 995–1019.
  45. Shao L., Sun Y., Zhang Z. et al. Deletion of proapoptotic Puma selectively protects hematopoietic stem and progenitor cells against high-dose radiation // Blood. 2010. Vol. 115. № 23. P. 4707–4714.
  46. Yu H., Shen H., Yuan Y. et al. Deletion of Puma protects hematopoietic stem cells and confers long-term survival in response to high-dose gamma-irradiation // Blood. 2010. Vol. 115. № 17. P. 3472–3480.
  47. Friedlander R.M., Gagliardini V., Rotello R.J., Yuan J. Functional role of interleukin 1 beta [IL-1 beta] in IL-1 beta-converting enzyme-mediated apoptosis // J. Exp. Med. 1996. Vol. 184. № 2. P. 717–724.
  48. Mulroy T., McMahon J.A., Burakoff S.J. et al. Wnt-1 and Wnt-4 regulate thymic cellularity // Eur. J. Immunol. 2002. Vol. 32. № 4. P. 967–971.
  49. Fernandez A., Huggins I.J., Perna L. et al. The WNT receptor FZD7 is required for maintenance of the pluripotent state in human embryonic stem cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014. Vol. 111. № 4. P. 1409–1414.
  50. Miyamoto K., Araki K.Y., Naka K. et al. Foxo3a is essential for maintenance of the hematopoietic stem cell pool // Cell Stem Cell. 2007. Vol. 1 № 1. P. 101–112.
  51. Essers M.A., de Vries-Smits L.M., Barker N. et al. Functional interaction between beta-catenin and FOXO in oxidative stress signaling // Science. 2005. Vol. 308. № 5725. P. 1181–1184.
  52. Lento W., Ito T., Zhao C. et al. Loss of β-catenin triggers oxidative stress and impairs hematopoietic regeneration // Genes Dev. 2014. Vol. 28. № 9. P. 995–1004. DOI: 10.1101/gad.231944.113.
  53. Miller T.W., Soto-Pantoja D.R., Schwartz A.L. et al. CD47 receptor globally regulates metabolic pathways that control resistance to ionizing radiation // J. Biol. Chem. 2015. Vol. 290. № 41. P. 24858–24874. DOI: 10.1074/jbc.M115.665752.
  54. Kozlov V.A. Intracellular factors regulating activity of hemopoietic stem cells // Bull. Exp. Biol. Med. 2005. Vol. 139. № 1. P. 106–113.
  55. Steingen C., Brenig F., Baumgartner L. et al. Characterization of key mechanisms in transmigration and invasion of mesenchymal stem cells // J. Mol. Cell Cardiol. 2008. Vol. 44. № 6. P. 1072–1084. DOI: 10.1016/j.yjmcc.2008.03.010
  56. Gao P., Tchernyshyov I., Chang T.C. et al. c-Myc suppression of miR-23a/b enhances mitochondrial glutaminase expression and glutamine metabolism // Nature. 2009. Vol. 458. № 7239. P. 762–765.
  57. Gaugler M.H., Squiban C., Mouthon M.A. et al. Irradiation enhances the support of haemopoietic cell transmigration, proliferation and differentiation by endothelial cells // Brit. J. Haematol. 2001. Vol. 113. № 4. P. 940–950.
  58. Nishida C., Kusubata K., Tashiro Y.et al. MT1-MMP plays a critical role in hematopoiesis by regulating HIF-mediated chemokine/cytokine gene transcription within niche cells // Blood. 2012. Vol. 119. № 23. P. 5405–5416. DOI: 10.1182/blood-2011-11-390849.
  59. Till J.E., McCullouch E.A. A direct measurement of the radiation sensitivity of normal mouse bone marrow cells // Radiat. Res. Vol. 14. № 2. P. 213–222.
  60. Ponte A.L., Ribeiro-Fleury T., Chabot V. et al. Granulocyte-colony-stimulating factor stimulation of marrow mesenchymal stromal cells promotes CD34+ Cell migration via a matrix metalloproteinase-2-dependent mechanism // Stem Cells Dev. 2012. Vol. 21. № 17. P. 3162–3172. DOI: 10.1089/scd.2012.0048
  61. Porter S.N., Cluster A.S., Signer R.A.J. et al. Cell autonomously modulates the hematopoietic stem cell response to inflammatory cytokine // Stem Cell Reports. 2016. Vol. 6. № 6. P. 806–914.
  62. Nowlan B., Futrega K., Brunck M.E. et al. HIF-1α stabilizing agent FG-4497 rescues human CD34+ cell mobilization in response to G-CSF in immuno-deficient mice // Exp. Hematol. 2017. Vol. 52. P. 50–55. DOI: 10.1016/j.exphem.2017.05.004.
  63. Rafii S., Mohle R., Shapiro F. et al. Regulation of hematopoiesis by microvascular endothelium // Leuk. Lymphoma. 1997. Vol. 27. № 5–6. P. 375–386.
  64. Heissig B., Ohki Y., Sato Y. et al. A role for niches in hematopoietic cell development // Hematology. 2005. Vol. 10. № 3. P. 247–253.
  65. Wang X., Cheng Q., Li L. et al. Toll-like receptors 2 and 4 mediate the capacity of mesenchymal stromal cells to support the proliferation and differentiation of CD34+ cells // Exp. Cell Res. 2012. Vol. 318. № 3. P. 196–206. DOI: 10.1016/j.yexcr.2011.11.001.
  66. Neta R., Vogel S.N., Oppenheim J.J., Douches S.D. Cytokines in radioprotection. Comparison of the radioprotective effects of IL-1 to IL-2, GM-CSF and IFN gamma. Lymphokine Res. 1986. Vol. 5. Suppl 1. P. 105–110.
  67. Neta R., Oppenheim J.J., Douches S.D. Interdependence of the radioprotective effects of human recombinant interleukin 1 alpha, tumor necrosis factor alpha, granulocyte colony-stimulating factor, and murine recombinant granulocyte-macrophage colony-stimulating factor // J. Immunol. 1988. Vol. 140. № 1. P. 108–111.
  68. Neta R., Oppenheim J.J. Cytokines in therapy of radiation injury // Blood. 1988. Vol. 72. № 3. P. 1093–1095.
  69. Легеза В.И., Чигарева Н.Г., Абдуль Ю.А., Галеев И.Ш. Цитокины как средства ранней патогенетической терапии радиационных поражений. Их эффективность и механизм действия // Радиац. Биол. Радиоэкол. 2000. Т. 40. № 4. С. 420–424.
  70. Рождественский Л.М., Коровкина Э.П., Дешевой Ю.Б. Применение рекомбинантного человеческого интерлейкина-1бета (беталейкин) для лечения острой лучевой болезни тяжелой степени у собак // Радиац. биол. Радиоэкол. 2008. Т. 48. № 2. С. 185–194.
  71. Reimers J., Wogensen L.D., Welinder B. et al. The pharmacokinetics, distribution and degradation of human recombinant interleukin 1 beta in normal rats // Scand. J. Immunol. 1991. Vol. 34. № 5. P. 597–610.
  72. Гребенюк А.Н., Аксенова Н.В., Зацепин В.В., Назаров В.Б., Власенко Т.Н. Влияние препарата Б-190 и интерлейкина-1бета на динамику количества клеток периферической крови и функциональный статус нейтрофилов облученных мышей // Радиац. биол. Радиоэкол. 2013. Т. 53. № 3. С. 290–295.
  73. van Os R., Lamont C., Witsell A., Mauch P.M. Radioprotection of bone marrow stem cell subsets by interleukin-1 and kit-ligand: implications for CFU-S as the responsible target cell population // Exp. Hematol. 1997. Vol. 25. № 3. P. 205–210.
  74. Легеза В.И., Чигарева Н.Г., Петкевич Н.В. и соавт. Экспериментальное изучение эффективности интерлейкина-1бета при радиационных поражениях // Гематол. Трансфузиол. 1995. Т. 40. № 3. 10–13.
  75. Рождественский Л.М., Дешевой Ю.Б., Лебедев В.Г., Нестерова Т.А. Зависимость терапевтического эффективности интерлейкина-1β от времени применения препарата мышам после воздействия ионизирующего излучения // Радиац. биол. Радиоэкол. 2002. Т. 42. № 1. С. 65–69.
  76. Linard C., Marquette C., Clarençon D. et al. Acute ileal inflammatory cytokine response induced by irradiation is modulated by subdiaphragmatic vagotomy // J. Neuroimmunol. 2005. Vol. 168. № 1–2. P. 83–95.
  77. Bigildeev A.E., Zezina E.A., Drize N.J. The effects of interleukin-1 beta and gamma-quantum braking radiation on mesenchymal progenitor cells // Mol. Biol. 2017. Vol. 51. № 3. P. 393–403.
  78. Hancock S.L., Chung R.T., Cox R.S., Kallman R.F. Interleukin 1 beta initially sensitizes and subsequently protects murine intestinal stem cells exposed to photon radiation // Cancer Res. 1991. Vol. 51. № 9. P. 2280–2285.
  79. Ульянова Л.П., Кетлинский С.А. Будагов Р.С. Исследование эффективности интерлейкина-1бета при лечении комбинированных радиационно-термических поражениях // Радиац. биол. Радиоэкол. 1997. Т. 37. № 2. С. 175–181.
  80. Fu Y., Wang Y., Du L. et al. Resveratrol inhibits ionising irradiation-induced inflammation in MSCs by activating SIRT1 and limiting NLRP-3 inflammasome activation // Int. J. Mol. Sci. 2013. Vol. 14. № 7. P. 14105–14118. DOI: 10.3390/ijms140714105.
  81. Singh V.K., Grace M.B., Parekh V.I. et al. Effects of genistein administration on cytokine induction in whole-body gamma irradiated mice // Int. Immunopharmacol. 2009. Vol. 9. № 12. P. 1401–1410. DOI: 10.1016/j.intimp.2009.08.012.
  82. Ha C.T., Li X.H., Fu D. et al. Genistein nanoparticles protect mouse hematopoietic system and prevent proinflammatory factors after gamma irradiation // Radiat. Res. 2013. Vol. 180. № 3. P. 316–325. DOI: 10.1667/RR3326.1.
  83. Васин М.В., Ушаков И.Б., Ковтун В.Ю. и соавт. Влияние сочетанного применения кверцетина и индралина на процессы пострадиационного восстановления системы кроветворения при острой лучевой болезни // Радиац. биол. Радиоэкол. 2011. Т. 51. № 2. С. 247–251.
  84. Fibbe W.E., van Damme J., Billiau A. et al. Interleukin 1 induces human marrow stromal cells in long-term culture to produce granulocyte colony-stimulating factor and macrophage colony-stimulating factor // Blood. 1988. Vol. 71. № 2. P. 430–435.
  85. Лебедев В.Г., Мороз Б.Б., Дешевой Ю.В., Рождественский Л.М. Исследование механизма противолучевого действия интерлейкина-1β на длительной культуре костного мозга // Радиац. биол. Радиоэкол. 2002. Т. 42. № 1. С. 60–64.
  86. Лебедев В.Г., Мороз Б.Б., Дешевой Ю.Б., Лырщикова А.В. Изучение роли гемопоэзиндуцирующего микроокружения в механизме радиозащитного действия интерлейкина-lβ на модели длительных культур костного мозга // Радиац. биол. Радиоэкол. 2004. Т. 44. № 2. С. 170–175.
  87. Hosoi Y., Kurishita A., Ono T., Sakamoto K. Effect of recombinant human granulocyte colony-stimulating factor on survival in lethally irradiated mice // Acta Oncol. 1992. Vol. 31. № 1. P. 59–63.
  88. Рождественский Л.М., Щёголева Р.А., Дешевой Ю.Б. и соавт. Сравнительная оценка лечебной эффективности разных препаратов гранулоцитарного колониестимулирующего фактора в опытах на облученных мышах // Радиац. биол. Радиоэкол. 2012. Т. 52. № 5. С. 503–509.
  89. Рождественский Л.М., Шлякова Т.Г., Щёголева Р.А. и соавт. Оценка лечебной эффективности отечественных препаратов Г‑КСФ в опытах на облученных собаках // Радиац. биол. Радиоэкол. 2013. Т. 53. № 1. С. 47–54.
  90. Farese A.M., Cohen M.V., Katz B.P. et al. Filgrastim improves survival in lethally irradiated nonhuman primates // Radiat. Res. 2013. Vol. 179. № 1. P. 89–100. DOI: 10.1667/RR3049.1.
  91. Селидовкин Г.Д., Барабанова А.В. Лечение острой лучевой болезни от равномерного и неравномерного облучения // В кн.: Радиационная медицина. Под ред. Л.А. Ильина. – М.: Изд. АТ. 2001. Т. 2. С. 108–129.

Для цитирования: Васин М.В., Соловьев В.Ю., Мальцев В.Н., Андрианова И.Е., Лукьянова С.Н. Первичный радиационный стресс, воспалительная реакция и механизм ранних пострадиационных репаративных процессов в облученных тканях // Мед. радиология и радиационная безопасность. 2018. Т. 63. № 6. С. 71–81.

DOI: 10.12737/article_5c0eb50d2316f4.12478307

PDF (RUS) Полная версия статьи

Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2018. Том 63. № 6. С. 83–84

ДИСКУССИЯ

DOI: 10.12737/article_5c0bdefea14005.22956834

В.Ю. Соловьев, В.И. Краснюк

О возможных ошибках в оценке радиационного риска неонкологических последствий у работников предприятия ПО «Маяк»

Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России, Москва. E-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

В.Ю. Соловьев – д.б.н., к.т.н., зав. лаб.; В.И. Краснюк – д.м.н., проф., зав. отд.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

  1. Азизова Т.В., Брагин Е.В., Хамада Н., Банникова М.В. Заболеваемость старческой катарактой в когорте работников предприятия атомной промышленности ПО «Маяк» // Мед. радиол. и радиац. безопасность. 2018. Т. 63. № 4. С. 15–21.
  2. Балашевич Л.И., Измайлов А.С. Диабетическая офтальмопатия. – СПб. 2012. 396 с.
  3. Брагин Е.В., Азизова Т.В., Банникова М.В. Риск заболеваемости старческой катарактой у работников предприятия атомной промышленности // Вестник офтальмологии. 2017. Т. 133. № 2. С. 57–63.
  4. Гуськова А.К. Основные источники ошибок в оценке пожизненного риска для здоровья у лиц, подвергшихся воздействию ионизирующего излучения // Мед. радиол. и радиац. безопасность. 2014. Т. 59. № 3. С. 26–31.
  5. Азизова Т.В., Хейлок Р., Мосеева М.Б., Пикулина М.В., Григорьева Е.С. Риск заболеваемости и смертности от цереброваскулярных заболеваний в когорте работников ПО «Маяк» 1948–1982 // Мед. радиол. и радиац. безопасность. 2015. Т. 60. № 4. С. 43–61.

Для цитирования: Соловьев В.Ю., Краснюк В.И. О возможных ошибках в оценке радиационного риска неонкологических последствий у работников предприятия ПО «Маяк» // Мед. радиология и радиационная безопасность. 2018. Т. 63. № 6. С. 83–84. DOI: 10.12737/article_5c0bdefea14005.22956834

DOI: 10.12737/article_5c0bdefea14005.22956834

PDF (RUS) Полная версия статьи

Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2018. Том 63. № 6. С. 82

ДИСКУССИЯ

DOI: 10.12737/article_5c0b8b4bcd76d1.44560283

А.Р. Туков, О.Г. Каширина
К статье Азизовой Т.В., Брагина Е.В., Хамада Н., Банниковой М.В.
«Заболеваемость старческой катарактой в когорте работников предприятия атомной промышленности ПО «Маяк»

Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России, Москва. E-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

А.Р. Туков – зав. лабораторией, к.м.н.;
О.Г. Каширина – в.н.с., к.м.н.

Для цитирования: Туков А.Р., Каширина О.Г. К статье Азизовой Т.В., Брагина Е.В., Хамада Н., Банниковой М.В. «Заболеваемость старческой катарактой в когорте работников предприятия атомной промышленности ПО «Маяк» // Мед. радиология и радиационная безопасность. 2018. Т. 63. № 6. С. 82.

DOI: 10.12737/article_5c0b8b4bcd76d1.44560283

PDF (RUS) Полная версия статьи

Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2019. Том 64. № 1. С. 5–14

РАДИАЦИОННАЯ БИОЛОГИЯ

DOI: 10.12737/article_5c55fb17a02054.31513592

Ю.П. Семочкина1, А.В. Родина1, Е.Ю. Москалева1, Е.С. Жорова2, В.П. Сапрыкин2, С.С. Арзуманов1, В.В. Сафронов3

Злокачественная трансформация мезенхимальных стволовых клеток из разных тканей мыши после смешанного гамма-нейтронного облучения in vitro

1. Научно-исследовательский центр «Курчатовский институт», Москва. E-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра. ;
2. Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России, Москва;
3. Лаборатория космического материаловедения, Калуга, Россия

Ю.П. Семочкина – м.н.с.;
А.В. Родина – в.н.с., к.б.н.;
Е.Ю. Москалева – в.н.с., д.б.н., проф., член Европейского общества по радиационным исследованиям (ERRS);
Е.С. Жорова – в.н.с., к.б.н.;
В.П. Сапрыкин – в.н.с., д.м.н.;
С.С. Арзуманов – зам. руководителя отдела, к.ф.-м.н.;
В.В. Сафронов – с.н.с., к.ф.-м.н.

Реферат

Цель: Изучение возможности злокачественной трансформации контрольных и облученных мезенхимальных стромальных стволовых клеток (МСК) из костного (КМ) и головного (ГМ) мозга и из жировой ткани (ЖТ) мыши и секреции ряда цитокинов этими клетками при действии смешанного γ-нейтронного (γ,n) излучения и γ-излучения.

Материал и методы: МСК выделяли и культивировали по общепринятым протоколам. γ,n-облучение проводили коллимированным пучком нейтронов и гамма-квантов на специальной станции ядерного реактора ИР-8. МСК облучали на 29 пассаже в дозах 0,05; 0,5 и 2 Гр, культивировали на протяжении 10 пассажей и трансплантировали подкожно по 1×106 клеток сингенным мышам линии C57BL/6. γ-облучение МСК проводили на гамма-установке ГУТ-200М в дозах 0,1–6 Гр. Уровень цитокинов в культуральной среде МСК определяли с помощью иммуноферментного метода.

Результаты: Обнаружено уменьшение ОБЭ при увеличении дозы облучения от 0,5 до 2,0 Гр. Максимальное среднее для всех МСК значение ОБЭ, равное 5,5, наблюдали при дозе 0,5 Гр. При увеличении дозы до 2 Гр ОБЭ в среднем снижалась до 2,5, а при увеличении дозы γ-излучения до 4,0 Гр – до 2,0. Действие γ,n-излучения на МСК из костного мозга мыши в дозах 0,05–2 Гр приводит к их злокачественной трансформации, а трансплантация облученных МСК КМ сингенным мышам вызывает развитие фибросарком с активной пролиферацией клеток. При введении контрольных МСК КМ и контрольных и облученных МСК ГМ и МСК ЖТ опухоли обнаружены не были. При подкожном введении МСК ЖТ, как и в случае МСК ГМ, после действия γ-излучения в дозах 0,1, 1 и 6 Гр, в отличие от МСК КМ, опухоли обнаружены не были. Опухоли содержали включения из производных тканей мезенхимного происхождения – мышечной, жировой, хрящевой и костной. В случае опухоли, развившейся после трансплантации подвергнутых γ,n-облучению в дозе 0,05 Гр МСК КМ, был обнаружен метастаз в плечо с проникновением опухолевых клеток между мышечными волокнами. Из опухолей получены линии клеток перевиваемой фибросаркомы мыши. При анализе уровня цитокинов TGFβ, VEGF, HGF и IL6 их наиболее высокий уровень обнаружен в культуральной среде МСК ЖТ. При действии γ,n-излучения и γ-излучения имеет место изменение профиля секреции исследованных цитокинов.

Заключение: Показана высокая чувствительность МСК КМ к злокачественной трансформации при действии γ,n-излучения и устойчивость к трансформации МСК ГМ и МСК ЖТ мыши к действию γ- и γ,n-излучения. Наиболее высокий уровень секреции цитокинов TGFβ, VEGF, HGF и IL6 МСК обнаружен в культуральной среде МСК ЖТ. Изменение профиля секреции цитокинов после облучения зависело от дозы и типа облучения.

Ключевые слова: мезенхимальные стволовые клетки, злокачественная трансформация, радиационный канцерогенез, γ,n‑излучение, γ-излучение, нейтроны, костный мозг, головной мозг, жировая ткань, цитокины, мыши

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Zacharatou Jarlskog C., Paganetti H. Risk of developing second cancer from neutron dose in proton therapy as function of field characteristics, organ, and patient age // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2008. Vol.72. № 1. P. 228–235. DOI: 10.1016/j.ijrobp.2008.04.069.
2. Мусабаева Л.И., Головков В.М. Терапия быстрыми нейтронами в онкологии // Сибирский онкологический журнал. 2015. № 2. С. 88–94.
3. Taddei P.J., Mirkovic D., Fontenot J.D. et al. Stray radiation dose and second cancer risk for a pediatric patient receiving craniospinal irradiation with proton beams // Phys. Med. Biol. 2009. Vol. 54. № 8. Р. 2259–2275. DOI: 10.1088/0031-9155/54/8/001.
4. Newhauser W.D., Durante M. Assessing the risk of second malignancies after modern radiotherapy // Nat. Rev. Cancer. 2011. Vol. 11. № 6. P. 438–448. DOI: 10.1038/nrc3069.
5. Stem Cell Biology with Respect to Carcinogenesis Aspects of Radiological Protection // ICRP Publication 131 // Ann. ICRP. Vol. 44. № 3/4. P. 7–357. DOI: 10.1177/0146645315595585.
6. Москалева Е.Ю., Семочкина Ю.П., Родина А.В. и соавт. Влияние облучения на мезенхимальные стволовые клетки костного и головного и мозга мыши и их способность индуцировать опухоли // Радиац. биология. Радиоэкология. 2017. Т. 57. № 3. С. 245–256.
7. Moskaleva E.Yu., Zhorova E.S., Semochkina Yu.P. et al. Characteristics of tumors that have developed in mice injected with syngenic irradiated mesenchymal stem cells of bone marrow // Cell Tissue Biol. 2017. Vol. 11. № 5. P. 381–388.
8. Zuk P.A., Zhu M., Mizuno H. et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies // Tissue Eng. 2001. Vol. 7. № 2. P. 211–228. DOI: 10.1089/107632701300062859.
9. Арзуманов С.С., Сафронов В.В., Стрепетов А.Н. Определение поглощенной в биологическом образце дозы при смешанном гамма-нейтронном облучении // Журнал техн. физики. 2018. Т. 8. № 10. С. 1581–1584.
10. Малета Ю.С., Тарасов В.В. Непараметрические методы статистического анализа в биологии и медицине. – М.: МГУ. 1982. 178 с.
11. Wolf C., Lafuma J., Masse R. et al. Neutron RBE for induction of tumors with high lethality in Sprague-Dawley rats // Radiat. Res. 2000. Vol. 154. № 4. P. 412–420.
12. Broerse J.J., van Bekkum D.W., Zoetelief J., Zurcher C. Relative biological effectiveness for neutron carcinogenesis in monkeys and rats // Radiat. Res. 1991. Vol. 128. (Suppl 1). P. S128–S135.
13. Kamiya K., Inoh A., Fujii Y. et al. High mammary carcinogenicity of neutron irradiation in rats and its promotion by prolactin // Jpn. J. Cancer Res. 1985. Vol. 76. № 6. P. 449–456.

Для цитирования: Семочкина Ю.П., Родина А.В., Москале­ва Е.Ю., Жорова Е.С., Сапрыкин В.П., Арзуманов С.С., Сафро­нов В.В. Злокачественная трансформация мезенхимальных стволовых клеток из разных тканей мыши после смешанного гамма-нейтронного облучения in vitro // Мед. радиология и радиационная безопасность. 2019. Т. 64. № 1. С. 5–14.

DOI: 10.12737/article_5c55fb17a02054.31513592

PDF (RUS) Полная версия статьи

  1. 2019-1-15-20_Belyaev_rus
  2. 2019-1-21-25_Petoyan_rus
  3. 2019-1-26-30_Galstyan_rus
  4. 2019-1-31-37_Vorotyntseva_rus

Адрес редакции журнала

 

123098, Москва, ул. Живописная, 46 Телефон: (499) 190-95-51. E-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

Местонахождение журнала

Посещаемость

2946506
Сегодня
Вчера
На этой нед.
На прошл. нед.
В этом мес.
В прошл. мес.
За все время
387
2962
3349
20395
44802
113593
2946506
Прогноз на сегодня
3792

Ваш IP:216.73.216.100
Visitor Counter

© Журнал "Медицинская радиология и радиационная безопасность" 2020г.

Яндекс.Метрика

Наверх